dc.contributorRuiz López, Freddy
dc.contributorOrtiz Reyes, Adriana
dc.contributorInstituto Colombiano de Medicina Tropical - ICMT
dc.creatorZuleta Ruiz, Boris Rene Alejandro
dc.date.accessioned2021-03-03T14:32:44Z
dc.date.available2021-03-03T14:32:44Z
dc.date.created2021-03-03T14:32:44Z
dc.date.issued2020-02-19
dc.identifierhttps://repositorio.unal.edu.co/handle/unal/79338
dc.description.abstractIn Colombia malaria is a public health concern, with P. falciparum and P. vivax as the pathogens responsible for 97% of cases in the country. In 2018, 61,339 cases were registered, with the departments of Chocó, Nariño, Córdoba and Antioquia with the highest reported case incidence. The department of Antioquia reported 5,415 cases, with the Urabá region as one of the most endemic for malaria. This is followed by the municipality of Turbo as the area with the second most reported cases, whose villages El Olleto and La Islita - the sites of this research - historically have contributed a significant number of cases. In these two villages the dynamics of malaria transmission are compounded by the presence of vectors belonging to species complexes and differences in land use such as agriculture or mining. Furthermore, social problems such as forced displacement and common mobility of people seeking work, generates floating, bearer and susceptible malaria human populations. Due to the absence of a vaccine for malaria, the prevention and control of this disease relies mainly on the diagnosis and timely treatment of infected people, as well as, vector control. In this context, a study was conducted in the villages of El Olleto and La Islita to determine the species of Anopheles spp. present, to evaluate the breeding sites and their natural infection with Plasmodium spp., and to know their role in the transmission of malaria. Four samplings were carried out between 2015 and 2016. CDC traps were installed in the intra-domiciliary peridomicil and extra domicile, also active search was carried out in animal (cows, pigs and chickens) and on protected human attractant, with prior informed consent. All the collected specimens were identified by morphology and by Cytochrome Oxidase I IOC (COI) gene sequences, known as the barcode region. In addition, the natural infection of Plasmodium spp. was evaluated in all mosquitoes collected using the nested PCR test of Snounou (1993). A total of 121 Anopheles were collected: Anopheles albimanus s.s. (n = 117), An. triannulatus s.l. (n = 1), An. pseudopunctipennis s.l. (n = 2) and An. Apicimacula s.l. (n = 1). As a result of human activities, natural and artificial breeding sites were found, which provided favourable conditions for the breeding of all species collected. Although the breeding sites were very similar, in terms of chemical, biotic and abiotic composition, An. triannulatus s.l. was only collected in an El Olleto breeding site, whilst An. Apicimacula s.l. only in the village of La Islita. Anopheles albimamus s.s. was collected in the breeding sites of both localities, meanwhile An. Pseudopunctipennis s.l. was not collected in any breeding site sampled. Anopheles albimanus s.s. presented wide distribution and the highest population densities, being collected in the two villages of study, having an exophageal and exophilic behaviour. In addition to an evident anthropophilia, this species is possibly the main malaria vector in the study region. However, because other species found - An. Pseudopunctipennis s.l. and An. triannulatus s.l. - have been considered vectors in other locations, it cannot be ruled out that in high population densities or in the presence of surrounding parasite in the area, they can be an important malaria vector in the region. This study did not find mosquitos or human positive for Plasmodium spp. This was possibly explained by vector control programs implemented by the Departmental of Health of Antioquia, which includes the "Papa Luis Program" between 2012 and 2014. However, the areas studied are of high risk of malaria transmission due to the Anopheles spp. found, their anthropophilia and the availability of breeding sites near homes. The particular geographical, climatic, economic and sociocultural conditions of the area; linked to the processes of anthropic intervention, compound the dynamics of malaria transmission in the study locations. In particular the climatic conditions present in the rainy season determine the dynamics of breeding sites and influence the presence or absence of Anopheles spp. This study demonstrates the need to perform mitigation interventions in the rainy seasons, due to the increased risk of insect breeding sites and subsequently an increase the population densities of adult insects, which will only require the presence of the parasite in the area to initiate a new outbreak of malaria transmission.
dc.description.abstractLa malaria es un grave problema de salud pública en Colombia, con P. falciparum y P. vivax como los patógenos responsables del 97% de los casos en el país. En el año 2018 se registraron 61.339 casos, siendo los departamentos de Chocó, Nariño, Córdoba y Antioquia los que presentan una mayor incidencia. El departamento de Antioquia presentó 5.415 casos, con la zona de Urabá como una de la más endémica para malaria y donde el municipio de Turbo, fue el segundo en el área con más casos. Las veredas El Olleto y La Islita sitios de esta investigación, históricamente han sido dos veredas que han aportado importante número de casos. En estas zonas la dinámica de transmisión de malaria es complicada, debido a la presencia de vectores pertenecientes a complejos de especies, al uso del suelo en agricultura, minería; igualmente a los problemas sociales como el desplazamiento forzado no planificado de humanos y a la movilidad común de personas que buscan trabajo, lo que genera poblaciones humanas flotantes portadoras y susceptibles de ser infectados. Debido a la ausencia de una vacuna para malaria, la prevención y control de esta enfermedad, se enfoca en el diagnóstico adecuado y tratamiento oportuno de las personas contagiadas y al control vectorial. En este contexto, se realizó un estudio que permitiera determinar las especies de Anopheles spp. presentes en las localidades estudiadas, evaluando los sitios de cría y su infección natural con Plasmodium spp., además de conocer su papel en la transmisión de malaria. En las veredas El Olleto y La Islita, se realizaron cuatro muestreos entre 2015 y 2016, se instalaron trampas CDC en el intradomicilio, peridomicilio y extradomicilio, igualmente se realizó búsqueda activa en corrales de animales (vacas, cerdos y gallinas) y sobre atrayente humano protegido, previo consentimiento informado. Todos los especímenes colectados fueron identificados por morfología y por medio de secuencias del gen Citocromo Oxidasa I - COI (ADNmt). Además, se evaluó en todos los mosquitos colectados, la infección natural de Plasmodium spp., utilizando la prueba de PCR anidada de Snounou de 1993. Se colectaron 121 mosquitos adultos pertenecientes a cuatro especies, An. albimanus s.s. (n = 117), An. triannulatus s.l. (n = 1), An, apicimacula s.l. (n = 1) y An. pseudopunctipennis s.l. (n = 2), el 96% de ellos picando al hombre. Las secuencias obtenidas de COI confirmaron las especies identificadas por morfología, no obstante, se observó, sin incluir a An. albimanus s.s., que las especies encontradas, hacen parte de complejos de especies, involucradas en la transmisión de malaria en Colombia y/o países vecinos. Ningún mosquito colectado, fue encontrado positivo con Plasmodium spp. Como resultado de las actividades humanas, se encontraron sitios de cría artificiales, que poseen condiciones favorables para la cría de todas las especies colectadas. Aunque los criaderos fueron muy similares, en cuanto composición química, biótica y abiótica, An. triannulatus s.l. solo se colectó en un criadero en El Olleto, mientras que An. apicimacula s.l. en La Islita. Anopheles albimamus s.s. se colectó en los criaderos de ambas localidades, entre tanto que An. pseudopunctipennis s.l. no fue colectado en ningún criadero. Anopheles albimanus s.s. presentó amplia distribución, colectándose en las dos veredas de estudio, tuvo un comportamiento exofágico y exofílico, además de una evidente antropofilia; esta especie posiblemente es el principal vector de malaria en la zona. No obstante, debido a que otras dos de las especies encontradas (An. pseudopuctipennis s.l. y An. triannulatus s.l.), han sido consideradas vectoras en otras localidades, no se puede descartar, que en altas densidades poblacionales o en presencia de parasito circundante en la zona, podrían ser un vector de malaria importante en la región. Aunque no se encontraron mosquitos positivos en las veredas estudiadas, ni pacientes, debido posiblemente a los programas de control vectorial realizados por la Secretaria de Salud Departamental de Antioquia, incluido el programa de “Papa Luis” entre los 2012 al 2014, las zonas estudiadas son de alto riesgo de transmisión de malaria, debido a los vectores encontradas y su grado de antropofilia, y la disponibilidad de sitios de cría cerca de las viviendas. La existencia de condiciones geográficas, climáticas, económicas y socioculturales particulares de la zona; ligado a los procesos de intervención antrópica, complican la dinámica de transmisión de malaria en las localidades de estudio. En particular las condiciones climáticas presentes en temporada de lluvia, las cuales determinan la dinámica de sitios de cría, que influyen en la presencia o ausencia de especies de Anopheles spp., en este estudio se evidencia la necesidad de realizar las intervenciones de mitigación, en la temporadas de lluvia, ya que los insectos van a encontrar mayor oferta de criaderos y por consiguiente aumentaran las densidades poblacionales de insectos adultos, los cuales, solo necesitarán la presencia del parásito en la zona, para el inicio de un nuevo brote de transmisión de malaria.
dc.languagespa
dc.publisherMedellín - Ciencias - Maestría en Ciencias - Entomología
dc.publisherEscuela de biociencias
dc.publisherUniversidad Nacional de Colombia - Sede Medellín
dc.relationWorld Health Organization (WHO). World report malaria. Genova, 2018.
dc.relationBrasil P, Zalis M, Pina-Costa A, Machado-Piqueira M, Bianco-Junior C, Silva S, et al. Plasmodium simium causing human malaria: a zoonosis withoutbreak potential in the Rio de Janeiro: Brazilian Atlantic Forest. 2017. p. 1038-1046.
dc.relationLourenço-de-Oliveira R, Deane LM. Simian malaria at two sites in the Brazilian Amazon. The infection rates of Plasmodium brasilianum in non-human primates. Vol. 90, Memórias del Instituto Oswaldo Cruz. 1995. p. 331-339.
dc.relationTa TH, Hisam S, Lanza M, Jiram AI, Ismail N, Rubio JM. First case of a naturally acquired human infection with Plasmodium cynomolgi. Malaria Journal. 2014;13:13-68.
dc.relationMartínez-Salazar E, Tobón-Castaño A, Blair S. Natural Plasmodium knowlesi malaria infections in humans. Biomédica. 2012;32:121-130.
dc.relationCenters for Disease Control and Prevention. Malaria. Pagina Web. revisado 3 de julio 2017.
dc.relationSIVIGILA. Casos totales de malaria en la semana epidemiológica 51 y acumulados del año. Bogotá; 2018.
dc.relationVergara J, Hurtado V, Arévalo M, Herrera S. Caracterización de la transmisión de Plasmodium malariae en cuatro regiones colombianas éndemicas de malaria. Biomédica. 2001;21:53-61.
dc.relationNiño CH, Cubides JR, Camargo‑ayala PA, Rodríguez‑celis CA, Quiñones T, Cortés‑castillo MT, et al. Plasmodium malariae in the Colombian Amazon region: you don’t diagnose what you don’t suspect. Malaria Journal. 2016;15:376-86. http//:dx.doi.org/10.1186/s12936-016-1629-3.
dc.relationPadilla J, Chaparro P, Molina K, Arevalo-Herrera M, Herrera S. Is there malaria transmission in urban settings in Colombia? Malaria Journal. 2015;14:453.http//:dx.doi.org/10.1186/s12936-015-0956-0.
dc.relationCarmona-Fonseca J. La malaria en Colombia, Antioquia y las zonas de Urabá y Bajo Cauca: panorama para interpretar la falla terapéutica antimalárica. Parte 2. Iatreia. 2004;17: 34-53
dc.relationHarbach RE. The Culicidae (Diptera): A review of taxonomy, classification and phylogeny. Vol. 1668, Zootaxa. 2007. p.591-638.
dc.relationGonzález R, Carrejo NS. Introducción al estudio taxonómico de Anopheles de Colombia, Claves taxonómicas y notas de distribución. Segunda ed. Cali: Universidad del Valle; 2009. p. 260.
dc.relationHarbach RE. The classification of genus Anopheles (Diptera: Culicidae): a working hypothesis of phylogenetic relationships. Bulletin Entomological Research. 2004;94:537-53.
dc.relationCollucci E, Sallum MA. Cladistic analysis of the subgenus Anopheles (Anopheles) Meigen (Diptera: Culicidae) based on morphological characters. Memorias del Instituto Oswaldo Cruz. 2007;102:277-91.
dc.relationSinka ME, Bangs MJ, Manguin S, Rubio-Palis Y, Chareonviriyaphap T, Coetzee M, et al. A global map of dominant malaria vectors Information. Parasites & Vector. 2012;5:1-11. https://doi.org/10.1186/1756-3305-5-69
dc.relationMontoya-Lerma J, Solarte YA, Giraldo-Calderón, Isabel G, Quiñones ML, Ruiz-López F, et al. Malaria vector species in Colombia: A review. Memorias del Instituto Oswaldo Cruz. 2011;106:223-38.
dc.relationOlano VA, Brochero HL, Sáenz R, Quiñones ML, Molina J. Mapas preliminares de la distribución de especies de Anopheles vectores de malaria en Colombia. Biomedica. 2001;21:402-408.
dc.relationHerrera S, Suarez M, Sanchez G, Qiñones M, Herrera M. Uso de la técnica radioinmunoensayo IRMA en Anopheles de Colombia para la detección de esporozoitos de Plasmodium. Colombia Medica. 1987;18:2-6.
dc.relationOrjuela LI, Herrera M, Erazo H, Quiñones ML. Especies de Anopheles presentes en el departamento del Putumayo y su infección natural con Plasmodium. Biomedica. 2013;33:42-52. http//dx.doi.org/10.7705.v33i1.619.
dc.relationNaranjo-Diaz N, Rosero D, Rúa-Uribe G, Luckhart S, Correa M. Abundance, behavior and entomological inoculation rates of anthropophilic anophelines from a primary Colombian malaria endemic area. Parasites & vector. 2013;6.
dc.relationHarrison BA, Ruiz-Lopez F, Falero GC, Savage HM, Pecor JE, Wilkerson RC. Anopheles (Kerteszia) lepidotus (Diptera: Culicidae), not the malaria vector we thought it was: Revised male and female morphology; larva, pupa, and male genitalia characters; and molecular verification. Zootaxa. 2012;1:1-17.
dc.relationQuiñones M, Ruiz F, Calle D, Harbach R, Erazo H, Linton Y. Incrimination of Anopheles (Nyssorhynchus) rangeli and An. (Nys.) oswaldoi as natural vectors of Plasmodium vivax in Southern Colombia. Memorias del Instituto Oswaldo Cruz. 2006;101:617-623. http://dx.doi.org/10.1590/S0074-02762006000600007.
dc.relationRuiz-Lopez F, Wilkerson RC, Conn JE, McKeon SN, Levin DM, Quĩones ML, et al. DNA barcoding reveals both known and novel taxa in the Albitarsis Group (Anopheles: Nyssorhynchus) of Neotropical malaria vectors. Parasites and Vectors. 2012;5. http//dx.doi:10.1186/1756-3305-5-44
dc.relationRuiz-Lopez F, Wilkerson RC, Conn JE, McKeon SN, Levin DM, Quĩones ML, et al. DNA barcoding reveals both known and novel taxa in the Albitarsis Group (Anopheles: Nyssorhynchus) of Neotropical malaria vectors. Parasites and Vectors. 2012;5.
dc.relationDirección Seccional de Salud de Antioquia (DSSA). Mapas de distribución de Anopheles del departamento de Antioquia. Medellín: DSSA; 2001.
dc.relationScarpassa VM, Cunha-Machado AS, Saraiva JF. Evidence of new species for malaria vector Anopheles nuneztovari sensu lato in the Brazilian Amazon region. Malaria Journal. 2016;15:205. http//dx.doi:10.1186/s12936-016-1217-6.
dc.relationFoster PG, Bergo ES, Bourke BP, Oliveira TMP, Nagaki SS, Sant’Ana DC, et al. Phylogenetic Analysis and DNA-based Species Confirmation in Anopheles (Nyssorhynchus). PLoS One. 2013;8.doi/org/10.1371 journal pone0054063.
dc.relationMirabello L, Conn JE. Population analysis using the nuclear white gene detects Pliocene/Pleistocene lineage divergence within Anopheles nuneztovari in South America. Medical and Veterinary Entomology. 2008;22:109-19. http//doi.org/10.1111/j.1365-2915.2008.00731.
dc.relationSierra DM, Velez ID, Linton Y-M. Malaria vector Anopheles (Nyssorhynchus) nuneztovari comprises one genetic species in colombia based on homogeneity of nuclear ITS2 rDNA. Journal Medical Entomology. 2004;41:302-7.
dc.relationConn J, Puertas YR, Seawright JA. A new cytotype of Anopheles nuneztovari from western Venezuela and Colombia. Journal of American Mosquito Control Association. 1993;9:294-301.
dc.relationRuiz-Lopez F, Wilkerson RC, Ponsonby DJ, Herrera M, Anice M, Sallum M, et al. Systematics of the Oswaldoi Complex (Anopheles, Nyssorhynchus) in South America Parasites & Vectors. 2013;6:324https//doi.org/10.1186/1756-3305-6-324.
dc.relationWilkerson RC, Foster PG, Li C, Mureb Sallum MA. Molecular phylogeny of Neotropical Anopheles (Nyssorhynchus) albitarsis species complex (Diptera: Culicidae). Annals of the Entomological Society of America. 2005;98:918-25.
dc.relationMoreno M, Bickersmith S, Harlow W, Hildebrandt J, McKeon SN, Silva-Do-Nascimento TF, et al. Phylogeography of the neotropical Anopheles triannulatus complex (Diptera: Culicidae) supports deep structure and complex patterns. Parasites and Vectors. 2013;6:1.
dc.relationSilva-do-Nascimento TF, Wilkerson RC, Monteiro FA. Molecular confirmation of the specific status of Anopheles halophylus (Diptera: Culicidae) and evidence of a new cryptic species within An. triannulatus in Central Brazil. Entomol Soc Am. 2006;43:455-9.
dc.relationCoetzee M, Estrada-Franco JG, Wunderlich CA, Hunt RH. Cytogenetic evidence for a species complex within Anopheles pseudopunctipennis Theobald (Diptera: Culicidae). American Journal of Tropical Medicine and Hygiene.. 1999;60:649-53.
dc.relationEstrada- Franco J, Ma M, Gwadz R, Sakai R, Lanzaro G, Laughinghouse A, et al. Evidence through cross-mating experiments of a species complex in Anopheles pseudopunctipennis sensu lato: a primary malaria vector of the American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 1993;49:746-55.
dc.relationElliot R. The influence of vector behavior on malaria transmission. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 1972;21:755-63.
dc.relationKitzmiller J., Kreutzer R., Tallaferro E. Chromosomal differences in populations of Anopheles nuneztovari. Bullitin World Health Organitation. 1973;48:435-45.
dc.relationLinley J, Lounibos L, Duzak D, Nishimura N. A description and morphometric comparison of eggs from eight geographic populations of the South American malaria vector Anopheles (Nyssorhynchus) nuneztovari (Diptera:Culicidae). 1996;12:275-92.
dc.relationScarpassa, Margarete, Tadei, Pedro, Suarez MF. Allozyme differentiation among allopatric populations of Anopheles nuneztovari (Diptera: Culicidae). Brazilian Journal of Genetics. 1996;19:265-9.
dc.relationScarpassa, Margarete, Geurgas S, Azeredo-Espin AM, Tadei P. Genetic divergence in mitochondrial DNA of Anopheles nuneztovari (Diptera: Culicidae) from Brazil and Colombia. Genetic and Molecular and Biology. 2000;23:71-8.
dc.relationConn E. J, Mitchell SE, Cockburn AF. Mitochondrial DNA analysis of the neotropical malaria vector Anopheles nuneztovari. Genome. 1998;41:313-327:313-27. https://doi.org/10.1139/g98-031
dc.relationCalado D, Foster PG, Bergo E, Dos Santos CLS, Galardo AK, Sallum MAM. Resurrection of Anopheles goeldii from synonymy with Anopheles nuneztovari (Diptera, Culicidae) and a new record for Anopheles dunhami in the Brazilian Amazon. Memorias del Instituto Oswaldo Cruz. 2008;103:791-9.
dc.relationPeyton E. Anopheles (Nyssorhynchus) dunhami, resurrected from synonymy with nuneztovari and validated as a senior synonym of Anopheles trinkae (Diptera: Culicidae). 1993;25:151-6.
dc.relationKlein T, Lima J, Tada M. Comparative Susceptibility of Anopheline Mosquitoes to Plasmodium falciparum in Rondonia, Brazil. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 1991;44:598-603.
dc.relationPovoa, Marinete, De Souza, Raimundo, Lacerda RN, Rodriguez de Souza J, Wirtz, Robert, Schlichting, Carl, et al. The importance of Anopheles albitarsis E and An. darlingi in human malaria transmission in Boa Vista, state of Roraima, Brazil. Memorias del Instituo Oswaldo Cruz. 2006;101:163-8.
dc.relationConn J, Wilkerson R, Segura M, de Souza R, Schlichting C, Wirtz R, et al. Emergence of a new neotropical malaria vector facilitated by human migration and changes in land use. American Journal Tropical Medicine Hygiene. 2002;66:18-22.
dc.relationFaran ME. Mosquito studies (Diptera, Culicidae). XXXIV. A revision of the Albimanus Section of the subgenus Nyssorhynchus of Anopheles. Contribution American Entomology Institud. 1980;15:1-216.
dc.relationForattini O. Entomologia Medica. Facultad de Higiene e Salud Publica. Departamento de Parasitologia 1962; vol 1;1:662.
dc.relationGalvao ALA, Lane J. Observacoes sobre algunos anofelinos de Salobra, Mato Grosso (Diptera, Culicidae). Revista Biology and Hygiene 1110-18. 1941;11:10-18.
dc.relationDo Nascimento TFS, Lourenco-de-Oliveira R. Anopheles halophylus, a new species of the subgenus Nyssorhynchus (Diptera: Culicidae) from Brazil. Memorias del Instituto Oswaldo Cruz. 2002;97:801-11.
dc.relationRosa-Freitas MG, Lourenço-de-Oliveira R, De Carvalho-Pinto CJ, Flores-Mendoza C, Silva-do-Nascimento TF. Anopheline Species Complexes in Brazil. Current Knowledge of Those Related to Malaria Transmission. Memorias del Instituto Oswaldo Cruz. 1998;93:651-5.
dc.relationGómez G, Bickersmith, Sara, González, Ranulfo, Conn, Jan E, Correa, Margarita. Molecular Taxonomy Provides New Insights into Anopheles Species of the Neotropical Arribalzagia Series. PLoS One. 2015;1-17.
dc.relationRosero D, Naranjo-Diaz N, Alvarez N, Cienfuegos A, Torres C, Luckhart, Shirley, et al. Colombian Anopheles triannulatus (Diptera: Culicidae) Naturally Infected with Plasmodium spp. ISNR Parasitology. 2013;927453 http://dx.doi.org/10.5402/2013/927453.
dc.relationMontoya C, Bascuñan P, Rodriguez-Zabala J, Corre M. Abundance, composition and natural infection of Anopheles mosquitoes from two malaria-endemic regions of Colombia. Biomedica. 2017;37:98-105. doi: https://doi.org/10.7705/
dc.relationManguin, Sylvie, Roberts, Donald, Peyton, E.L, Fernandez-Salas I, Barreto M, Fernandez R, et al. Biochemical Systematics and Population Genetic Structure of Anopheles pseudopunctipennis, Vector of Malaria in Central and South America. American Journal Tropical Med Hyg. 1995;53:362-77.
dc.relationEstrada-Franco JG, Lanzaro GC, Ma MC, Walker-Abbey A, Romans P, Galvan- Sanchez C, et al. Characterization of Anopheles pseudopunctipennis sensu lato from three countries of neotropical America from variation in allozymes and ribosomal DNA. American Jouornal of Tropical Medicine and Hygiene. 1993;49:735-45.
dc.relationEstrada-Franco JG, Ma MC, Lanzaro GC, Gwadz R, Galván-Sánchez C, Céspedes JL, et al. Genetic evidence of a species complex in Anopheles pseudopunctipennis sensu lato. Bulletin of the Pan American Health Organization. 1993. p.26-31.
dc.relationGutiérrez LA, González JJ, Gómez GF, Castro MI, Rosero DA, Luckhart S, et al. Species composition and natural infectivity of anthropophilic Anopheles (Diptera: Culicidae) in the states of Córdoba and Antioquia, Northwestern Colombia. Memorias del Instituto Oswaldo Cruz. 2009;104:1117-24.
dc.relationOcampo C, Brogdon W, Orrego C, Montoya-Lerma, J. Insecticide susceptibility in Anopheles pseudopunctipennis from Colombia: comparison between bioassays and biochemical assays. Journal American Mosquito Control Assoc. 2000;16:331-8.
dc.relationFaran M, Linthicum K. A handbook of the Amazonian species of Anopheles (Nyssorhynchus) (Diptera: Culicidae). Mosquito Systematic. 1981;13;1:1-81.
dc.relationNavarro J. Actualización taxonómica de la tribu Anophelini de Venezuela con nueva clave para la identificación de larvas de 4to estadio. Boletín Malariología y Salud Ambiental. 1996;36: 25-43.
dc.relationGómez GF, Cienfuegos A V., Gutiérrez LA, Correa MM, Conn JE. Morphological and molecular analyses demonstrate identification problems of Anopheles nuneztovari (Diptera: Culicidae) using dichotomous keys. Revista Colombiana de Entomología. 2010;36; 1:68-75.
dc.relationCalle D a., Quiñones ML, Erazo HF, Jaramillo N. Discriminación por morfometría geométrica de once especies de Anopheles ( Nyssorhynchus ) presentes en Colombia. Biomédica. 2008;28:371-85.
dc.relationHebert P, Cywenska A, Ball S, DeWaard J. Biological identifications through barcodes. Procceding of the Real Society L B. 2003;270:313-21. https://doi.org/10.1098/rspb.2002.2218.
dc.relationUribe-Gil G, Alcaraz-López G. El mal de ojo y su relación con el marasmo y kwashiorkor: El caso de las madres de Turbo, Antioquia, Colombia. Investigación Educación en Enfermería. 2007;25:72-82.
dc.relationWorld Health Organization (WHO). Manual on practical entomology in malaria. Part II. Methods and techniques. Manual on practical entomology in malaria Part II Methods and techniques. 1975;6-191.
dc.relationRueda L. Global diversity of mosquitoes (Insecta: Diptera: Culicidae) in freshwater. Hidrobiologia. 2008;595:477-87. doi: 10.1007/s10750-007-9037-x
dc.relationSuárez M, Quiñones M, Robayo M. Clave para la determinación taxonómica de larvas y adultos hembras de los principales anofelinos de Colombia. Ministerio de Salud de Colombia. 1988; p. 49.
dc.relationScott J, Williams G, Collins F. Identification of single specimens of the Anopheles gambiae complex by the polymerase chain reaction. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 1993;49:520-529.
dc.relationFolmer O, Black M, Hoeh W, Lutz R, Vrijenhoe KR. DNA primers for amplification of mitochondrial Cytochrome C Oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Molecular Marine Biology Biotechnology. 1994;3:294-299.
dc.relationRuiz-López F, Linton YM, Ponsonby DJ, Conn JE, Herrera M, Quiñones ML, et al. Molecular comparison of topotypic specimens confirms Anopheles (Nyssorhynchus) dunhami Causey (Diptera: Culicidae) in the Colombian Amazon. Memorias del Instituto Oswaldo Cruz. 2010;105:899-903
dc.relationSnounou G, Viriyakosol S, Jarra W, Thaithong S, Brown KN. Identification of the four human malaria parasite species in field samples by the polymerase chain reaction and detection of a high prevalence of mixed infections. Molecular Biochemical Parasitology. 1993;58:283-92.
dc.relationKimura M. A simple method for estimating evolutionary rate of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. Journal Molecular Evolution. 1980;16:111-20.
dc.relationSaitou N, Nei M. The neighbor-joining method: A new method for reconstructing phylogenetic trees. Molecular and Biology Evolution. 1987;4:406-25.
dc.relationSnounou G, Viriyakbosol S, Zhu Xin P, Jarra W, Pinheiro L, do Rosario V, et al. High sensitivity of detection of human malaria parasites by the use of nested polymerase chain reaction. Molecular Biochemical Parasitology. 1993;61:315-20.
dc.relationAhumada ML, Orjuela LI, Pareja PX, Conde M, Cabarcas DM, Cubillos EFG, et al. Spatial distributions of Anopheles species in relation to malaria incidence at 70 localities in the highly endemic Northwest and South Pacific coast regions of Colombia. Malaria Journal. 2016;15:407 htpp/doi 10.1186/s12936-016-1421-4.
dc.relationHerrera M, Orjuela L, Peñalver S, Conn JE, Quiñones M. Anopheles species composition explains differences in Plasmodium transmission in La Guajira, northern Colombia. Memorias del Instituto Oswaldo Cruz. 2014;1-5 doi: 10.1590/0074-0276140126.
dc.relationHoyos R, Suaza J, Tenorio A, Uribe S, Gallego J. Molecular detection of Eastern Equine Encephalitis virus in mosquitoes from La Pintada (Antioquia). Revista Medicina Veterinaria y Zootecnia, Córdoba. 2015;20:4800-6.
dc.relationMarteis L, Natal D, Sallum M, Souza A, Oliveira T, Santos R. Mosquitos da Caatinga e importancia epidemiologica da fauna de mosquitos (Diptera: Culicidae) de una floresta seca tropical endemica do Brasil. Revista Brasileira de Epidemiologia 2017.
dc.relationMcKeon S, Schlichting C, Povoa M, Conn4 JE. Ecological Suitability and Spatial Distribution of Five Anopheles Species in Amazonian Brazil. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. 2013;88:1079-86 doi:10.4269/ajtmh.12-0203.
dc.relationRubio-Palis Y. Anopheles (Nyssorhynchus) de Venezuela, Taxonomía, Bionomía, Ecología e Importancia Médica. Maracay, Venezuela, 2000. p. 138.
dc.relationGutiérrez LA, Naranjo N, Jaramillo LM, Muskus C, Luckhart S, Conn JE, et al. Natural infectivity of Anopheles species from the Pacific and Atlantic Regions of Colombia. Acta Tropica. 2008;107:99-105; doi: 10.1016/j.acta tropica.
dc.relationFrederikson EC. Bionomics and Conbtrol of Anopheles albimanus. Panamerican Health Organitation. 1993;34:76
dc.relationGonzález R, Martínez LM. Nuevo registro de distribución altitudinal de Anopheles albimanus Wiedemann (Diptera:culicidae). Boletin del Museo Entomológico Universidad del Valle. 2006;7:19-23.
dc.relationArevalo-Herrera M, Quiñones M, Guerra C, Céspedes N, Giron S, Ahumada M, et al. Malaria in selected non-Amazonian countries of Latin America Myriam. Acta Tropica. 2012;121:303-14.
dc.relationMontoya C, Bascuñan P, Rodriguez-Zabala J, Corre M. Abundance, composition and natural infection of Anopheles mosquitoes from two malaria-endemic regions of Colombia. Biomédica. 2017;37:98-105.
dc.relationBrochero H, Pareja PX, Ortiz G, Olano VA. Sitios de cría y actividad de picadura de especies de Anopheles en el municipio de Cimitarra, Santander, Colombia. Biomédica. 1 de junio de 2006;26:269- 277.
dc.relationRodríguez M, Chavez B, Orozco A, Martinez-Palomo A. Fine structure of the eggs of Anopheles (Anopheles apicimacula, (Diptera: Culicidae). Journal of American Mosquito Control Association. 1996;12:454-459.
dc.relationFajardo P, Barreto P. Anophelinos de Córdoba (Buenaventura, Colombia). Colombia Medica. 1983;14:99-103.
dc.relationGonzález-Ceron L, Rodríguez M, Nettel J, Villareal C, Kain K, Hernández J. Differential Susceptibilities of Anopheles albimanus and Anopheles pseudopunctipennis to Infections with Coindigenous Plasmodium vivax Variants VK210 and VK247 in Southern Mexico. Infection and Immununity. 1999;410-2.
dc.relationHayes J, Calderón G, Falcon R, Zambrano V. Newli incriminated Anopheline vector of human malaria Parasites in Junin departament, Perú. Journal American Mosquitou Control Association. 1987;3:418-22.
dc.relationLardeux F, Loayza P, Bouchité B, Chavez T. Host choice and human blood index of Anopheles pseudopunctipennis in a village of the Andean valleys of Bolivia. Malaria Journal. 2007;6:8. doi:10.1186/1475-2875-6-8.
dc.relationZapata M, Cienfuegos A, Quirós O, Quiñones M, Luckhart S, Correa M. Discrimination of seven Anopheles species from San Pedro de Uraba, Antioquia, Colombia, by polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism analysis of its sequences. American Journal Tropical Medicine and Hygiene. 2007;77:67-72.
dc.relationTadei W, Thatcher B, Santos J, Scarpassa V, Rodrigues IB, Silva M. Ecologic Observation on Anopheline, vectors of malaria in the Brazilian Amazon. American Journal Tropical Medicine and Hygiene. 1998;59:325-35.
dc.relationMantilla G, Oliveros H, Barnston A. The role of ENSO in understanding changes in Colombia’s annual malaria burden by region, 1960–2006. Malaria Journal. 2009;8.
dc.relationRejmánková J, Grieco J, Achee N, Robert D. Ecology of larval habitats. Anopheles mosquitoes - New insights into malaria vectors. in Tech. 2013.
dc.relationGonzález R. Efecto del criadero sobre la duración del ciclo de vida y productividad de Anopheles albimanus Wiedemann (Diptera: Culicidae). 2005;6:1-6.
dc.relationOrganización Panamericana de la Salud (OPS). Biología y Ecología de Anopheles albimanus, Wiedeman en Centroamérica. 1996. p. 189-220.
dc.relationHoyos R, Graciano S, Ríos J. Evaluación del Notonectido como control biológico de larvas de Aedes Aegypti. Revista de Ciencias Ambientales y Sostenibilidad CAS. 2014;1:4-14.
dc.relationConn JE, Wilkerson R, Segura N, De Souza R, Chlichting C, Wirtz R, et al. Emergence of a new neotropical malaria vector facilitated by human migration and changes in Land use. American Journal Tropical Medicine and Hygiene. 2002;66:18-22.
dc.relationBlanco S, Martínez A, Cano R, Tello R. I Introducción del Bacillus sphaericus cepa-2362 (Griselefs) para el control biológico de vectores maláricos en Guatemala. Revista Cubana de Medicina Tropical. 2000;52:37-43.
dc.relationBlanco S, Colombi E, Flores L, Canales D. Aplicación del biolarvicida Bacillus sphaericus-2362 para el control de la Malaria en un área de salud de la República de Honduras. Revista Cubana de Medicina Tropical. 2002;54:134-41.
dc.relationAgeep T, Cox J, Hassam M, Knols B, Benedict M, Malcolm C. Spatial and temporal distribution of the malaria mosquito Anopheles arabiensis in northern Sudan: Influence of environmental factors and implications for vector control. Malaria Journal. 2009;7:123-36.
dc.relationGould E, Higgs S. Impact of climate change and other factors on emerging arbovirus diseases. Transaction Real Society of Tropical Medicine and Hygiene. 2009;103:103-121.
dc.rightsAtribución-NoComercial 4.0 Internacional
dc.rightsAcceso abierto
dc.rightshttp://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
dc.rightsinfo:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rightsDerechos reservados - Universidad Nacional de Colombia
dc.titleIdentificación de las especies de Anopheles spp. (Diptera:Culicidae), presentes en un foco activo de malaria en Turbo, Antioquia
dc.typeOtro


Este ítem pertenece a la siguiente institución