Caracterización genómica y fenotípica de la especie Brycon henni (Characiformes: Characidae) en cuencas hidrográficas de los ríos Yotoco, Sonso, Guabas y Sabaletas

dc.contributorMuñoz Florez, Jaime Eduardo
dc.contributorJaramillo Cruz, Carlos Alberto
dc.contributorGrupo de Investigación en Diversidad Biológica
dc.creatorVelez Sinisterra, Edilma
dc.date.accessioned2021-02-12T01:50:35Z
dc.date.accessioned2022-09-21T16:15:49Z
dc.date.available2021-02-12T01:50:35Z
dc.date.available2022-09-21T16:15:49Z
dc.date.created2021-02-12T01:50:35Z
dc.date.issued2021-02-10
dc.identifierVélez-Sinisterra. (2020). Caracterización genómica y fenotípica de la especie Brycon henni (Characiformes: Characidae) en cuencas hidrográficas de los ríos Yotoco, Sonso, Guabas y Sabaletas (tesis de maestría). Universidad Nacional de Colombia, Palmira, Colombia
dc.identifierhttps://repositorio.unal.edu.co/handle/unal/79200
dc.identifier.urihttp://repositorioslatinoamericanos.uchile.cl/handle/2250/3390646
dc.description.abstractEven when there is great diversity and quantity of marine and freshwater species in Colombia, studies regarding the phylogenetic relationships of fish species in the country are still insufficient, despite the need for rigorous characterization of the local fish fauna. The objective of the present investigation was to characterize the freshwater species Brycon henni in hydrographic basins located in four municipalities of the department of Valle del Cauca-Colombia, through the use of barcode and geometric morphometry. A highly conserved nuclear gene that could be easily amplified and sequenced (RAG1) was used, as well as the 16S rRNA and COI mitochondrial regions. The results showed an identification of four species Brycon sp., for the individuals collected in Sabaletas (Buenaventura), Brycon henni for the individuals from Guabas, Sonso and Yotoco, Bryconamericus caucanus for two individuals collected in Guabas and finally Creagrutus sp. for five individuals collected in Yotoco. For geometric morphometry, images were used and a total of nine marks were recorded in each individual. The results indicated a complete separation of the Brycon sp. and Brycon henni through body structure. Likewise, a marked separation is observed with the individuals of the species Creagrutus sp. and Bryconamericus caucanus.
dc.description.abstractAun cuando se presenta gran diversidad y cantidad de especies marinas y dulceacuícolas en Colombia, los estudios referidos a las relaciones filogenéticas de las especies ícticas en el país siguen siendo insuficientes, pese a la necesidad de caracterización rigurosa de la ictiofauna local. La presente investigación tuvo como objetivo caracterizar la especie dulceacuícola Brycon henni en cuencas hidrográficas ubicadas en cuatro municipios del departamento del Valle del Cauca-Colombia, mediante el uso de código de barras y morfometría geométrica. Se empleó un gen nuclear altamente conservado que pudiera ser amplificado y secuenciado fácilmente (RAG1), así como las regiones mitocondriales 16S rRNA y COI. Los resultados mostraron una identificación de cuatro especies Brycon sp., para los individuos colectados en Sabaletas (Buenaventura), Brycon henni para los individuos provenientes de Guabas, Sonso y Yotoco, Bryconamericus caucanus para dos individuos colectados en Guabas y finalmente Creagrutus sp. para cinco individuos colectados en Yotoco. Para la morfometría geométrica se utilizaron imágenes y se registraron un total de nueve marcas en cada individuo. Los resultados indicaron una separación completa de las especies Brycon sp. y Brycon henni por medio de la estructura del cuerpo. Asimismo, se observa una marcada separación con los individuos de la especie Creagrutus sp. y Bryconamericus caucanus.
dc.languagespa
dc.publisherPalmira - Ciencias Agropecuarias - Maestría en Ciencias Agrarias
dc.publisherMaestría Ciencias Agrarias
dc.publisherUniversidad Nacional de Colombia - Sede Palmira
dc.relationAbe, K. T., Mariguela, T. C., Avelino, G. S., Foresti, F., y Oliveira, C. (2014). Systematic and historical biogeography of the Bryconidae (Ostariophysi: Characiformes) suggesting a new rearrangement of its genera and an old origin of Mesoamerican ichthyofauna. BMC Evolutionary Biology, 14(1), 152. https://doi.org/10.1186/1471-2148-14-152
dc.relationAguirre, W. E., y Jiménez-Prado, P. (2018). Guía práctica de morfometría geométrica. Aplicaciones en la ictiología. Pontificia Universidad Católica del Ecuador Sede Esmeraldas (PUCESE).
dc.relationArboleda Chacón, L., Olivera Ángel, M., Tabares Serna, C. J., Echeverri Echeverría, A., y Serna Vélez, D. F. (2005). Maduración gonadal en hembras de sabaleta (Brycon henni) y su relación con variables medioambientales. Politécnica, 1(1), 95–103. https://revistas.elpoli.edu.co/index.php/pol/article/view/7
dc.relationArias, M. C., Francisco, F. D. O., y Silvestre, D. (2003). O DNA mitocondrial em estudos populacionais e evolutivos de meliponíneos. Apoidea Neotropica (GAR Mello y I. Alves-Dos-Santos, Eds.) Universidade Do Extremo Sul Catarinense, Criciúma, 305-309.
dc.relationArruda, P. S., Ferreira, D. C., Oliveira, C., y Venere, P. C. (2019). DNA barcoding reveals high levels of divergence among mitochondrial lineages of Brycon (Characiformes, bryconidae). Genes, 10(9), 639. https://doi.org/10.3390/genes10090639
dc.relationAntunes RS, Gomes VN, Prioli SM, Prioli RA, Júlio HF Jr, Prioli LM, Agostinho CS, Prioli AJ. (2010). Molecular characterization and phylogenetic relationships among species of the genus Brycon (Characiformes: Characidae) from four hydrographic basins in Brazil. Genet Mol Res. 9 (2): 674-84. doi: 10.4238/vol9-2gmr759. PMID: 20449799.
dc.relationBaker, M. L., Wares, J. P., Harrison, G. A., y Miller, R. D. (2004). Relationships among the families and orders of marsupials and the major mammalian lineages based on recombination activating gene-1. Journal of Mammalian Evolution, 11(1), 1–16. https://doi.org/10.1023/B:JOMM.0000029143.39776.ec
dc.relationBingpeng X, Heshan L, Zhilan Z, Chunguang W, Yanguo W, y Jianjun W. (2018). DNA barcoding for identification of fish species in the Taiwan Strait. PLoS One. 13 (6): e0198109. doi: 10.1371/journal.pone.0198109. PMID: 29856794; PMCID: PMC5983523.
dc.relationBookstein, F. L. (1997). Chapter 3: Landmarks. En Morphometric Tools for Landmark Data Geometry and Biology. https://doi.org/10.5860/CHOICE.48-1788
dc.relationBotero-Botero, A., y Ramírez-Castro, H. (2011). Ecología trófica de la sabaleta Brycon henni (Pisces: Characidae) en el río Portugal de Piedras, Alto Cauca, Colombia. Revista MVZ Córdoba, 16(1), 2349–2355.
dc.relationBufalino, A. P., y Mayden, R. L. (2010). Molecular phylogenetics of North American phoxinins (Actinopterygii: Cypriniformes: Leuciscidae) based on RAG1 and S7 nuclear DNA sequence data. Molecular Phylogenetics and Evolution, 55(1), 274–283. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2009.12.017
dc.relationCarmona, L. M., y Schatz, D. G. (2017). New insights into the evolutionary origins of the recombination-activating gene proteins and V(D)J recombination. The FEBS Journal, 284(11), 1590–1605. https://doi.org/10.1111/febs.13990
dc.relationCavalcanti, M. J., y Duarte, P. R. (2019). Geographic variation in Prionotus punctatus (Bloch) (Teleostei, Scorpaeniformes, Triglidae): a geometric morphometric analysis. Tropical Diversity, 1(2), 48–56.
dc.relationChen W, Yang J, Li Y y Li X. (2019). Exploring taxonomic diversity and biogeography of the family Nemacheilinae (Cypriniformes). Ecol Evol. 9 (18): 10343-10353. doi: 10.1002/ece3.5553. PMID: 31624553; PMCID: PMC6787813.
dc.relationChiari Y, van der Meijden A, Madsen O, Vences M, Meyer A. (2009). Base composition, selection, and phylogenetic significance of indels in the recombination activating gene-1 in vertebrates. Front Zool. 6: 32. doi: 10.1186/1742-9994-6-32. PMID: 20015384; PMCID: PMC2803162.
dc.relationChowdhury LM, A K, Pr D, Vs B, Shanis R, Chelath M, Pavan-Kumar A, Krishna G. (2019). Molecular identification and phylogenetic assessment of species under genus Parapenaeopsis Alcock, 1901, from Indian waters. Mitochondrial DNA A DNA Mapp Seq Anal. 30 (2): 191-200. doi: 10.1080/24701394.2018.1472249. Epub 2018 Jul 10. PMID: 29989478.
dc.relationClarridge, J. E. (2004). Impact of 16S rRNA gene sequence analysis for identification of bacteria on clinical microbiology and infectious diseases. Clinical Microbiology Reviews, 17(4), 840–862. https://doi.org/10.1128/CMR.17.4.840-862.2004
dc.relationCoenye, T., y Vandamme, P. (2003). Intragenomic heterogeneity between multiple 16S ribosomal RNA operons in sequenced bacterial genomes. FEMS Microbiology Letters, 228(1), 45–49. https://doi.org/10.1016/S0378-1097(03)00717-1
dc.relationCramer, C. A., Bonatto, S. L., y Reis, R. E. (2011). Molecular phylogeny of the Neoplecostominae and Hypoptopomatinae (Siluriformes: Loricariidae) using multiple genes. Molecular Phylogenetics and Evolution, 59(1), 43–52. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2011.01.002
dc.relationCVC- FUNAGUA (ed.). (2011). Planes de manejo para la Conservación de 16 especies focales de vertebrados en el departamento del Valle del Cauca. https://ecopedia.cvc.gov.co/sites/default/files/archivosAdjuntos/pm_sp_focales_fauna_2010.pdf
dc.relationDe Luna, E. (2020). Integrando análisis morfométricos y filogenéticos: de la sistemática fenética a la morfometría filogenética. Acta Botánica Mexicana, 127(e1640), 1–50. https://doi.org/10.21829/abm127.2020.1640
dc.relationDe Oliveira Sartori, A. G., y Amancio, R. D. (2012). Pescado: importância nutricional e consumo no Brasil. Segurança Alimentar e Nutricional, 19(2), 83–93. https://doi.org/10.20396/san.v19i2.8634613
dc.relationDNA Learning Center, C. S. H. L. (2014). Using DNA Barcodes to Identify and Classify Living Things. https://dnabarcoding101.org/files/using-dna-barcodes.pdf
dc.relationDoNascimiento, C., Herrera Collazos, E. E., y Maldonado-Ocampo, J. A. (2018). Lista de especies de peces de agua dulce de Colombia / Checklist of the freshwater fishes of Colombia. v2.10. Asociación Colombiana de Ictiólgos. Dataset/Checklist. https://doi.org/10.15472/NUMRSO
dc.relationElias Marianne, Hill Ryan I, Willmott Keith R, Dasmahapatra Kanchon K, Brower Andrew V.Z, Mallet James y Jiggins Chris D (2007). Limited performance of DNA barcoding in a diverse community of tropical butterflies. Proc. R. Soc. B. 274: 2881–2889 http://doi.org/10.1098/rspb.2007.1035
dc.relationEpitashvili G, Geiger M, Astrin JJ, Herder F, Japoshvili B, Mumladze L. (2020). Towards retrieving the Promethean treasure: a first molecular assessment of the freshwater fish diversity of Georgia. Biodivers Data J. 8: e57862. doi: 10.3897/BDJ.8.e57862. PMID: 33177949; PMCID: PMC7599205.
dc.relationEsquivel, M. A., Merino, M., Restrepo, J., Narváez, A., Polo, C., Plata, J., y Puentes, V. (2014). Estado de la Pesca y la Acuicultura en Colombia. En Autoridad Nacional de Acuicultura y Pesca (AUNAP).
dc.relationFAO. (1996). Informe de la Cumbre Mundial sobre la Alimentación. Organizacion de las Naciones Unidas para la Agricultura y la Alimentacion. Recuperado el 28 de octubre, 2019, de http://www.fao.org/wfs/index_es.htm
dc.relationFAO. (2016). El estado mundial de la pesca y la acuicultura. Contribución a la seguridad alimentaria y la nutrición para todos. http://www.fao.org/3/a-i5555s.pdf
dc.relationFAO. (2018). El estado mundial de la pesca y la acuicultura 2018. Recuperado el 25 de enero, 2020, de http://www.fao.org/state-of-fisheries-aquaculture/es/
dc.relationFeulner, P. G. D., Kirschbaum, F., Mamonekene, V., Ketmaier, V., y Tiedemann, R. (2007). Adaptive radiation in African weakly electric fish (Teleostei: Mormyridae: Campylomormyrus): A combined molecular and morphological approach. Journal of Evolutionary Biology, 20(1), 403–414. https://doi.org/10.1111/j.1420-9101.2006.01181.x
dc.relationGalan, A. L. (2016). Morfometría geométrica: el estudio de la forma y su aplicación en biología. Temas de Ciencia y Tecnología, 19(55), 53-59.
dc.relationGangan SS, Pavan-Kumar A, Jahageerdar S y Jaiswar AK. (2020). A new species of Stolephorus (Clupeiformes: Engraulidae) from the Bay of Bengal, India. Zootaxa. 27; 4743 (4): zootaxa.4743.4.6. doi: 10.11646/zootaxa.4743.4.6. PMID: 32230314.
dc.relationGarcía-Alzate, C. A., Román-Valencia, C., y González, M. I. (2010). Morfogeometría de los peces del género Hyphessobrycon (Characiformes: Characidae), grupo heterorhabdus, en Venezuela. Revista de Biología Tropical, 58(3), 801–811.
dc.relationGoldstein PZ, DeSalle R. (2011). Integrating DNA barcode data and taxonomic practice: determination, discovery, and description. Bioessays. 33(2):135-47. doi: 10.1002/bies.201000036. PMID: 21184470.
dc.relationHare, M. P. (2001). Prospects for nuclear gene phylogeography. Trends in Ecology & Evolution, 16(12), 700–706. https://doi.org/10.1016/S0169-5347(01)02326-6
dc.relationHebert, P. D., Cywinska, A., Ball, S. L., y Dewaard, J. R. (2003). Biological identifications through DNA barcodes. Proceedings of the Royal Society of London. Series B: Biological Sciences, 270(1512), 313–321. https://doi.org/10.1098/rspb.2002.2218
dc.relationHLPE (2014). La pesca y la acuicultura sostenibles para la seguridad alimentaria y la nutrición. Un informe del Grupo de alto nivel de expertos en seguridad alimentaria y nutrición del Comité de Seguridad Alimentaria Mundial. http://www.fao.org/3/a-i3844s.pdf
dc.relationHubert, N., Hanner, R., Holm, E., Mandrak, N. E., Taylor, E., Burridge, M., … Bernatchez, L. (2008). Identifying Canadian Freshwater Fishes through DNA Barcodes. PLoS One, 3(6), e2490. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0002490
dc.relationHurtado-Alarcón, J. C., Mancera-Rodríguez, N. J., y Saldamando-Benjumea, C. I. (2011). Variabilidad genética de Brycon henni (Characiformes: Characidae) en la cuenca media de los ríos Nare y Guatapé, sistema río Magdalena, Colombia. Revista de Biología Tropical, 59(1), 269–282. http://www.scielo.sa.cr/scielo.php?pid=S0034-77442011000100023yscript=sci_arttext
dc.relationJennings, S., Stentiford, G. D., Leocadio, A. M., Jeffery, K. R., Metcalfe, J. D., Katsiadaki, I., … Verner-Jeffreys, D. W. (2016). Aquatic food security: insights into challenges and solutions from an analysis of interactions between fisheries, aquaculture, food safety, human health, fish and human welfare, economy and environment. Fish and Fisheries, 17(4), 893–938. https://doi.org/10.1111/faf.12152
dc.relationJiménez-Prado, P. J., Vásquez, F., Rodríguez-Olarte, D., y Taphorn, D. (2020). Efectos de la especie invasora Poecilia gillii (Cyprinodontiformes: Poeciliidae) sobre Pseudopoecilia fria en ríos costeros de la región del Chocó, Ecuador. Revista de Biología Tropical, 68(1), 122–138. https://doi.org/10.15517/rbt.v68i1.36000
dc.relationKim, S., Eo, H.-S., Koo, H., Choi, J.-K., y Kim, W. (2010). DNA barcode-based molecular identification system for fish species. Molecules and Cells, 30(6), 507–512. https://doi.org/10.1007/s10059-010-0148-2
dc.relationKimura, M. (1980). A simple method for estimating evolutionary rates of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. Journal of Molecular Evolution, 16(2), 111–120. https://doi.org/10.1007/BF01731581
dc.relationKress, W. J., García-Robledo, C., Uriarte, M., y Erickson, D. L. (2015). DNA barcodes for ecology, evolution, and conservation. Trends in Ecology & Evolution, 30(1), 25–35. https://doi.org/10.1016/j.tree.2014.10.008
dc.relationLandínez-García, R. M., Alzate, J. F., y Márquez, E. J. (2014). Complete mitogenome of the neotropical fish Brycon henni, Eigenmann 1913 (Characiformes, Bryconidae). Mitochondrial DNA Part A, 27(3), 2259–2260. https://doi.org/10.3109/19401736.2014.984170
dc.relationLandínez-García, R.M. y Márquez, E.J. (2020). Population genetics of the fish Brycon henni (Characiformes: Bryconidae) using species-specific polymorphic microsatellite loci. Revista de Biología Tropical, 68(3), 847-861.
dc.relationLanteri, A. (2007). Código de Barras de ADN y sus posibles aplicaciones en el campo de la entomología. Rev. Soc. Entomol. Argent. 66 (3-4): 15–25.
dc.relationLasso, C. A., Gutiérrez, F. de P., Morales-Betancourt, M. A., Agudelo Córdoba, H., Ajiaco-Martínez, R. E., y (Editores). (2011). II. Pesquerías Continentales de Colombia: cuencas del Magdalena-Cauca, Sinú, Canalete, Atrato, Orinoco, Amazonas y vertiente del Pacífico. (Serie Edit). http://awsassets.panda.org/downloads/pesquerias_cuencas_2.pdf
dc.relationLazzarotto, H., Barros, T., Louvise, J., y Caramaschi, É. P. (2017). Morphological variation among populations of Hemigrammus coeruleus (Characiformes: Characidae) in a Negro River tributary, Brazilian Amazon. Neotropical Ichthyology, 15(1).
dc.relationLenis, G. A., Restrepo, L. F., y Cruz-Casallas, P. E. (2009). Evaluación de tres protocolos de tratamiento hormonal sobre el diámetro de ovocitos de sabaleta Brycon henni. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 22(2), 131–142.
dc.relationLenis, G., Restrepo, L. F., Rivera, J. C., Monsalve, F., y Casallas, P. C. (2009a). Reproducción inducida y producción de alevinos de Sabaleta Brycon henni: determinación del tiempo de latencia utilizando extracto de hipófisis de carpa. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 22(2), 143-155.
dc.relationLenis, G. A., Cruz, P. E., y David, C. A. (2015). Reproducción inducida de la sabaleta Brycon henni: revisión bibliográfica. Revista Lasallista de Investigación, 12(1),211-220. https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=695/69542290020
dc.relationLima, F. (2003). Subfamiliy Bryconinae. En Reis RE, Kullande SO, Ferraris CJ, eds. Check list of the fresh water fishes of south and central America. (Edipucrs, pp. 174–178).
dc.relationLima, F. C. T. (2017). A revision of the cis-andean species of the genus Brycon Müller & Troschel (Characiformes: Characidae). En Zootaxa (Vol. 4222). https://doi.org/10.11646/zootaxa.4222.1.1
dc.relationMacLeod, N. (2017). Morphometrics: History, development methods and prospects. Zoological Systematics, 42(1), 4–33. https://doi.org/10.11865/zs.201702
dc.relationMaldonado-Ocampo, J. A., Ortega-Lara, A., Usma, J. S., Galvis, G., Villa-Navarro, F. A., Vásquez, L., (2005). Peces de los Andes de Colombia. Instituto Humboldt Colombia.
dc.relationMancera, N., Marquez, E., & Hurtado, J. (2013). Uso de citogenética y técnicas moleculares en estudios de diversidad genética en peces colombianos. En J. Zamora, A. Ortega, & C. Ortiz (Eds.), Biología molecular aplicada a la producción animal y la conservación de especies silvestres (pp. 237-312). Colombia: Centro de publicaciones Universidad Nacional de Colombia Sede Medellín
dc.relationMancera-Rodríguez, N. J. (2017). Biología reproductiva de Brycon henni (Teleostei: Bryconidae) y estrategias de conservación para los ríos Nare y Guatapé, cuenca del río Magdalena, Colombia. Revista de Biología Tropical, 65(3), 1105-1119.
dc.relationMartínez-Orozco, H. J., y Vásquez-Zapata, G. L. (2001). Aspectos reproductivos de la sabaleta Brycon henni (Piscis: Characidae) en el embalse de la salvajina, Colombia. Revista Asoc Colomb Ictiol., 4, 75–82.
dc.relationMateus, L. A. F., Penha, J. M. F., y Petrere, M. (2004). Fishing resources in the rio Cuiabá basin, Pantanal do Mato Grosso, Brazil. Neotropical Ichthyology, 2(4), 217–227. https://doi.org/10.1590/s1679-62252004000400004
dc.relationMat Jaafar, T. N., Taylor, M. I., Mohd Nor, S. A., Bruyn, M. D., y Carvalho, G. R. (2020). Comparative genetic stock structure in three species of commercially exploited Indo‐Malay Carangidae (Teleosteii, Perciformes). Journal of fish biology, 96(2), 337-349. doi: 10.1111/jfb.14202. Epub 2019 Dec 15. PMID: 31721192.
dc.relationMeyer CP, Paulay G (2005) DNA Barcoding: Error Rates Based on Comprehensive Sampling. PLoS Biol 3(12): e422. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.0030422.
dc.relationMerino, M., Bonilla, S. P., y Bages, F. (2014). Plan Nacional para el Desarrollo de la Acuicultura Sostenible en Colombia (PlaNDAS). http://aunap.gov.co/wp-content/uploads/2016/04/Plan-Nacional-para-el-Desarrollo-de-la-Acuicultura-Sostenible-Colombia.pdf
dc.relationMinisterio de Agricultura y Desarrollo Rural. (2019). Estrategia de política para el sector de pesca y acuicultura. https://sioc.minagricultura.gov.co/Documentos/6. Documento de Politica pesca y acuicultura Abril8de2019 31 Jul 2019.pdf
dc.relationMojica, J. I., Usma, J. S., Álvarez-León, R., y Lasso, C. A. (Eds). (2012). Libro rojo de peces dulceacuícolas de Colombia 2012. Bogotá, D.C. Colombia.: Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt, Instituto de Ciencias Naturales de la Universidad Nacional de Colombia, WWF Colombia y Universidad de Manizales.
dc.relationMontoya López, A. F., Carrillo, L. M., y Olivera Ángel, M. (2006). Algunos aspectos biológicos y del manejo en cautiverio de la Sabaleta Brycon henni Eigenmann, 1913 (Pisces: Characidae). Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias., 19(2), 180–186.
dc.relationMontoya Páez, J. D., Pineda Santis, H., y Restrepo-Betancur, G. (2018). Maduración in vitro de ovas de Brycon henni (Pisces: Characidae) con dos preparaciones hormonales. Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 29(4), 1355-1363.
dc.relationMoreno, L. T. (2018). La Pesca e los Pescadores Artesanales en Colombia. PEGADA - A Revista Da Geografia Do Trabalho, 19(2). https://doi.org/10.33026/peg.v19i2.5514
dc.relationMoritz, C. y C. Cicero. (2004). DNA barcoding: promise and pitfalls. PloS. Biol. 2: 1529–1531. https://doi.org/10.1371/journal.pbio.0020354
dc.relationMuñoz-A., L. E., Arredondo-B., J. V., y Carranza-Quiceno, J. A. (2019). Estructura genética poblacional del pez Brycon henni (Characiformes: Characidae) en la región andina de Colombia utilizando marcadores microsatélites. Revista de Biología Tropical, 67(4), 733-744.
dc.relationOliveira, C., Avelino, G. S., Abe, K. T., Mariguela, T. C., Benine, R. C., Ortí, G., … Corrêa e Castro, R. M. (2011). Phylogenetic relationships within the speciose family Characidae (Teleostei: Ostariophysi: Characiformes) based on multilocus analysis and extensive ingroup sampling. BMC Evolutionary Biology, 11(1), 275. https://doi.org/10.1186/1471-2148-11-275
dc.relationOliveira, J. A., Crispim, B. D. A., Martins, N. M., Silva, A. O., Dourado, P. L. R., Rocha, M. P., y Grisolia, A. B. (2013). Sequências de gene mitocondrial para identificação de espécies animais. Revista Colombiana de Ciencia Animal, 5(2), 396–407. https://dialnet.unirioja.es/descarga/articulo/4732888.pdf
dc.relationPardo, B. G., Machordom, A., Foresti, F., Porto-Foresti, F., Azevedo, M. F. C., Bañon, R., … Martínez, P. (2005). Phylogenetic analysis of flatfish (Order Pleuronectiformes) based on mitochondrial 16s rDNA sequences. Scientia Marina, 69(4), 531–543. https://doi.org/10.3989/scimar.2005.69n4531
dc.relationPaz, A., Gonzalez, M., y Crawford, A. J. (2011). DNA Barcode of Life: An Introduction and Perspective. Acta Biológica Colombiana, 16(3), 161–176. Recuperado de https://www.redalyc.org/pdf/3190/319027888011.pdf
dc.relationPereira, L. H., Hanner, R., Foresti, F., y Oliveira, C. (2013). Can DNA barcoding accurately discriminate megadiverse Neotropical freshwater fish fauna? BMC Genetics, 14(1), 20. https://doi.org/10.1186/1471-2156-14-20
dc.relationPineda Santis, H., Arboleda Chacón, L., Echeverry Echavarria, A., Urcuqui Inchima, S., Pareja Molina, D., Olivera Ángel, M., y Builes Gómez, J. (2007). Caracterización de la diversidad genética en el pez Brycon henni (Characiformes: Characidae) en Colombia central por medio de marcadores RAPD. Revista de Biología Tropical, 55(3–4), 1025–1035.
dc.relationPolly, P. D. (2018). Geometric Morphometrics. The Encyclopedia of Archaeological Sciences, 1–5. https://doi.org/10.1002/9781119188230.saseas0258
dc.relationRach, J., Desalle, R., Sarkar, I. N., Schierwater, B., y Hadrys, H. (2008). Character-based DNA barcoding allows discrimination of genera, species and populations in Odonata. Proceedings. Biological sciences, 275(1632), 237–247. https://doi.org/10.1098/rspb.2007.1290
dc.relationRahman MM, NorÉn M, Mollah AR, Kullander S. (2018). The identity of Osteobrama cotio, and the status of "Osteobrama serrata" (Teleostei: Cyprinidae: Cyprininae). Zootaxa. 23; 4504 (1): 105-118. doi: 10.11646/zootaxa.4504.1.5. PMID: 30486037.
dc.relationRatnasingham, S., y Hebert, P. D. (2007). BOLD: The Barcode of Life Data System. Molecular Ecology Notes, 7(3), 355–364. Recuperado de http://www.ibol.org/phase1/about-us/what-is-dna-barcoding/
dc.relationRestrepo-Betancur, G., Montoya Páez, J. D., y Arboleda Chacón, L. (2017). Evaluación de dos crioprotectores y tres curvas de congelación programable en la criopreservación de semen de Brycon henni (Pisces: Characidae). Revista de Investigaciones Veterinarias del Perú, 28(3), 597-605.
dc.relationRosa, R. S., y Lima, F. C. T. (2008). Os peixes ameaçados de extinção. In: Machado, A.B.M., Drummond, G.M. y Paglia, A.P. (Eds.). Livro Vermelho Da Fauna Brasileira Ameaçada de Extinção, 2, 1–278.
dc.relationRuiz, R., y Cipriano, R. (2006). Morfometría geométrica de Astyanax siapae (pisces: characidae). Dahlia, 9, 63–75.
dc.relationRussell, P. (2010). Genetics. Harper Collins Publishers.
dc.relationSanabria Boudri, F. S. (2019). Importancia del pescado en la nutrición humana: Aporte de macro y micronutrientes, formas de consumo. Universidad Nacional de Educación Enrique Guzmán y Valle.
dc.relationShimabukuro-Dias, C. K., Oliveira, C., Reis, R. E., y Foresti, F. (2004). Molecular phylogeny of the armored catfish family Callichthyidae (Ostariophysi, Siluriformes). Molecular Phylogenetics and Evolution, 32(1), 152–163. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2003.11.010
dc.relationSlice, D. E. (2001). Landmark coordinates aligned by procrustes analysis do not lie in Kendall’s shape space. Systematic Biology, 50(1), 141–149. https://doi.org/10.1080/10635150119110
dc.relationSpringer, M. S., DeBry, R. W., Douady, C., Amrine, H. M., Madsen, O., de Jong, W. W., & Stanhope, M. J. (2001). Mitochondrial versus nuclear gene sequences in deep-level mammalian phylogeny reconstruction. Molecular biology and evolution, 18(2), 132-143. https://doi.org/10.1093/oxfordjournals.molbev.a003787
dc.relationSullivan, J. P., Lundberg, J. G., y Hardman, M. (2006). A phylogenetic analysis of the major groups of catfishes (Teleostei: Siluriformes) using rag1 and rag2 nuclear gene sequences. Molecular Phylogenetics and Evolution, 41(3), 636–662. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2006.05.044
dc.relationTabares, C. J., Montoya, A. F., Arboleda, L., Echeverri, A., Restrepo, L. F., y Olivera-Angel, M. (2006). Efecto de la pluviosidad y el brillo solar sobre la producción y características del semen en el pez Brycon henni (Pisces: Characidae). Revista de Biología Tropical, 54(1), 179-187.
dc.relationTognelli, M. F., Lasso, C. A., Bota-Sierra, C. A., Jiménez-Segura, L. F., Cox, N. A., y (Editores). (2016). Estado de conservación y distribución de la biodiversidad de agua dulce en los Andes tropicales. UICN. https://doi.org/10.2305/IUCN.CH.2016.02.es
dc.relationToro Ibacache, María Viviana, Manriquez Soto, Germán, & Suazo Galdames, Iván. (2010). Morfometría Geométrica y el Estudio de las Formas Biológicas: De la Morfología Descriptiva a la Morfología Cuantitativa. International Journal of Morphology, 28(4), 977-990. https://dx.doi.org/10.4067/S0717-95022010000400001
dc.relationVan der Molen, S., Martínez, N. A., y González, J. R. (2007). Introducción a la morfometría geométrica curso teórico-práctico. Universidad de Barcelona.
dc.relationVarona, J. M. D., Ruales, J. J., y Corporal, R. T. (2019). Intraspecific evaluation in the morphology of Glossogobius guiris using geometric morphometric analysis from Lake Mainit, Agusan del Norte, Philippines. http://dx.doi.org/10.12692/ijb/14.1.379-387
dc.relationVélez Sinisterra, E., y Velandia Rodríguez, E. S. (2014). Caracterización molecular de la especie íctica Brycon henni mediante la técnica RAMS en la Reserva Natural de Yotoco y el río Sonso.
dc.relationWang T, Zhang YP, Yang ZY, Liu Z, Du YY. (2020). DNA barcoding reveals cryptic diversity in the underestimated genus Triplophysa (Cypriniformes: Cobitidae, Nemacheilinae) from the northeastern Qinghai-Tibet Plateau. BMC Evol Biol. 20 (1): 151. doi: 10.1186/s12862-020-01718-0. PMID: 33183225; PMCID: PMC7663858.
dc.relationWard, R. D., Hanner, R., y Hebert, P. D. N. (2009). The campaign to DNA barcode all fishes, FISH-BOL. Journal of Fish Biology, 74(2), 329–356. https://doi.org/10.1111/j.1095-8649.2008.02080.x
dc.relationWard, Robert D., Zemlak, T. S., Innes, B. H., Last, P. R., y Hebert, P. D. N. (2005). DNA barcoding Australia’s fish species. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences, 360(1462), 1847–1857. https://doi.org/10.1098/rstb.2005.1716
dc.relationWikstrom, M. K. (1977). Proton pump coupled to cytochrome c oxidase in mitochondria. Nature, 266(5599), 271–273. https://doi.org/10.1038/266271a0
dc.relationWong, L. L. (2011). DNA Barcoding and Related Molecular Markers for Fish Species Authentication, Phylogenetic Assessment and Population Studies. Auburn University.
dc.relationZaniboni, E., Reynalte-Tataje, D., y Weingartner, M. (2006). Potencialidad del género Brycon en la piscicultura brasileña. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 19(2), 233–240.
dc.relationZhang, D. X., y Hewitt, G. M. (2003). Nuclear DNA analyses in genetic studies of populations: practice, problems and prospects. Molecular Ecology, 12(3), 563–584.
dc.relationZhang L, Zhang J, Song P, Liu S, Liu P, Liu C, Lin L, Li Y. (2020). Reidentification of Decapterus macarellus and D. macrosoma (Carangidae) reveals inconsistencies with current morphological taxonomy in China. Zookeys. 995: 81-96. doi: 10.3897/zookeys.995.58092. PMID: 33281469; PMCID: PMC7688621.
dc.relationZhang L, Zhang J, Song P, Liu S, Liu P, Liu C, Lin L, Li Y. (2020). Reidentification of Decapterus macarellus and D. macrosoma (Carangidae) reveals inconsistencies with current morphological taxonomy in China. Zookeys. 995: 81-96. doi: 10.3897/zookeys.995.58092. PMID: 33281469; PMCID: PMC7688621.
dc.relationAkram, S., Arshan, K. M. L., y Abdul, J. H. (2017). DNA barcoding and phylogenetic analysis of five ascidians (Phlebobranchia) distributed in Gulf of Mannar, India. Mitochondrial DNA Part A: DNA Mapping, Sequencing, and Analysis, 29(4), 581–586. https://doi.org/10.1080/24701394.2017.1325479
dc.relationArruda, P. S., Ferreira, D. C., Oliveira, C., y Venere, P. C. (2019). DNA barcoding reveals high levels of divergence among mitochondrial lineages of Brycon (Characiformes, bryconidae). Genes, 10(9), 639. https://doi.org/10.3390/genes10090639
dc.relationAshikaga, F. Y., Orsi, M. L., Oliveira, C., Senhorini, J. A., y Foresti, F. (2015). The endangered species Brycon orbignyanus: genetic analysis and definition of priority areas for conservation. Environmental Biology of Fishes, 2015, 1845–1855. https://doi.org/10.1007/s10641-015-0402-8
dc.relationBarbosa Barreto, A. J., Sampaio, I., Schneider, H., y Santos, S. (2014). Molecular phylogeny of weakfish species of the Stellifer group (Sciaenidae, Perciformes) of the western South Atlantic based on mitochondrial and nuclear data. PloS ONE, 9(7), e102250. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0102250
dc.relationBardakci, F., y Skibinski, D. O. (1994). Application of the RAPD technique in tilapia fish: species and subspecies identification. Heredity, 73(2), 117–123. https://doi.org/10.1038/hdy.1994.110
dc.relationBingpeng, X., Heshan, L., Zhilan, Z., Chunguang, W., Yanguo, W., y Jianjun, W. (2018). Dna barcoding for identification of fish species in the taiwan strait. PLoS ONE, 13(6). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0198109
dc.relationBotero-Botero, A., y Ramírez-Castro, H. (2011). Ecología trófica de la sabaleta Brycon henni (Pisces: Characidae) en el río Portugal de Piedras, Alto Cauca, Colombia. Revista MVZ Córdoba, 16(1), 2349–2355.
dc.relationBrown, K., y Vénte, H., (2008). Formulación del Diagnóstico Participativo en el Territorio Colectivo del Consejo Comunitario de Sabaletas, Bogotá y La Loma (Anteproyecto). Instituto técnico agrícola establecimiento público de educación superior especialización técnica profesional en Agroecología Guadalajara de Buga. http://www.gipag.org/archivos/sabaletas.pdf
dc.relationBufalino, A. P., y Mayden, R. L. (2010). Molecular phylogenetics of North American phoxinins (Actinopterygii: Cypriniformes: Leuciscidae) based on RAG1 and S7 nuclear DNA sequence data. Molecular Phylogenetics and Evolution, 55(1), 274–283. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2009.12.017
dc.relationBuiles, J., y Urán, A. (1974). Estudio del ciclo sexual de la sabaleta Brycon henni Eigenmann. Su comportamiento y fecundación artificial. Actualidades Biológicas, 7(3), 2–12.
dc.relationCastro Paz, F. P., Da Silva Batista, J., y Rebelo Porto, J. I. (2014). DNA barcodes of rosy tetras and allied species (Characiformes: Characidae: Hyphessobrycon) from the Brazilian Amazon basin. PLoS ONE, 9(5), 1–8. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0098603
dc.relationCenter, C. S. H. L. DNA Learning (2014). Using DNA Barcodes to Identify and Classify Living Things. https://dnabarcoding101.org/files/using-dna-barcodes.pdf
dc.relationChandra, A., y Idrisova, A. (2011). Convention on Biological Diversity: a review of national challenges and opportunities for implementation. Biodiversity and Conservation, 20(14), 3295-3316.
dc.relationChang, C. H., Shao, K. T., Lin, H. Y., Chiu, Y. C., Lee, M. Y., Liu, S. H., y Lin, P. L. (2017). DNA barcodes of the native ray-finned fishes in Taiwan. Molecular Ecology Resources, 17(4), 796–805. https://doi.org/10.1111/1755-0998.12601
dc.relationClement, M., Posada, D., y Crandall, K. A. (2000). TCS: a computer program to estimate gene genealogies. Molecular Ecology, 9(10), 1657–1659. https://doi.org/10.1046/j.1365-294x.2000.01020.x
dc.relationCramer, C. A., Bonatto, S. L., y Reis, R. E. (2011). Molecular phylogeny of the Neoplecostominae and Hypoptopomatinae (Siluriformes: Loricariidae) using multiple genes. Molecular Phylogenetics and Evolution, 59(1), 43–52. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2011.01.002
dc.relationCVC y Universidad del Valle. (2001). Caracterización de la calidad del agua del río Cauca y sus tributarios. Capítulo 6. 94-95. http://www.cvc.gov.co/cvc/Mosaic/dpdf1/volumen6/6-caracterizacioncartrcv6f1.pdf.
dc.relationCorporación Autónoma Regional del Valle del Cauca (2014). Definir los criterios e identificar cartográficamente las áreas estratégicas para el abastecimiento hídrico en los municipios del Valle del Cauca. http://asamblea.valledelcauca.gov.co/info/tmp/P.O._001-2018_Ene.24__Anexo_Areas_Estrategicas_CVC.pdf
dc.relationCorporación Autonoma Regional del Valle del Cauca (2014a). Audiencia pública ambiental de seguimiento al plan de acción 2012-2015 y rendición de cuentas 2013. https://www.cvc.gov.co/sites/default/files/2018-07/Informe%20Audiencias%20Publicas%202013%20DAR%20Centro%20Sur.pdf
dc.relationCorporación Autónoma Regional del Valle del Cauca (2019). Formulación del plan de ordenación y manejo de la subzona hidrográfica 2631: Arroyohondo, Yumbo, Mulaló, Vijes, Yotoco, Mediacanoa y Piedras. https://www.cvc.gov.co/sites/default/files/2019-11/P19_%20Documento%20POMCA%20formulado.pdf
dc.relationDarriba, D., Taboada, G. L., Doallo, R., y Posada, D. (2012). jModelTest 2: more models, new heuristics and parallel computing. Nature Methods, 9(8), 772–772. https://doi.org/10.1038/nmeth.2109
dc.relationEsquivel, M. A., Merino, M. ., Restrepo, J., Narváez, A., Polo, C., Plata, J., y Puentes, V. (2014). Estado de la pesca y la acuicultura en Colombia. Autoridad Nacional de Acuicultura y Pesca (AUNAP).
dc.relationGong, S., Ding, Y., Wang, Y., Jiang, G., y Zhu, C. (2018). Advances in DNA barcoding of Toxic Marine Organisms. In International journal of molecular sciences, (Vol. 19, Issue 10, p. 2931). MDPI AG. https://doi.org/10.3390/ijms19102931
dc.relationGualdrón Durán, L. E. (2016). Evaluación de la calidad de agua de ríos de Colombia usando parámetros físicoquímicos y biológicos. Revista Dinámica Ambiental, 1, 83–102. https://doi.org/10.18041/2590-6704/ambiental.1.2016.4593
dc.relationGuimarães, E. C., De Brito, P. S., Feitosa, L. M., Carvalho-Costa, L. F., y Ottoni, F. P. (2018). A new species of Hyphessobrycon Durbin from northeastern Brazil: Evidence from morphological data and DNA barcoding (Characiformes, Characidae). ZooKeys, 2018(765), 79–101. https://doi.org/10.3897/zookeys.765.23157
dc.relationHebert, P., y Gregory, T. R. (2005). The Promise of DNA Barcoding for Taxonomy. Systematic Biology, 54(5), 852–859. https://doi.org/10.1080/10635150500354886
dc.relationHilsdorf, A. W. S., Oliveira, C., Thadeo de Lima, F. C., y Kayoko Matsumoto, C. (2008). A phylogenetic analysis of Brycon and Henochilus (Characiformes, Characidae, Bryconinae) based on the mitochondrial gene 16S rRNA. Genetics and Molecular Biology, 31, 366–371. https://doi.org/10.1590/S1415-47572008000200034
dc.relationHubert, N., Hanner, R., Holm, E., Mandrak, N. E., Taylor, E., Burridge, M., Watkinson, D., Dumont, P., Curry, A., Bentzen, P., Zhang, J., April, J., y Bernatchez, L. (2008). Identifying Canadian Freshwater Fishes through DNA Barcodes. PLoS One, 3(6), e2490. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0002490
dc.relationHurtado-Alarcón, J. C., Mancera-Rodríguez, N. J., y Saldamando-Benjumea, C. I. (2011). Variabilidad genética de Brycon henni (Characiformes: Characidae) en la cuenca media de los ríos Nare y Guatapé, sistema río Magdalena, Colombia. Revista de Biología Tropical, 59(1), 269–282. http://www.scielo.sa.cr/scielo.php?pid=S0034-77442011000100023&script=sci_arttext
dc.relationIndu, M., Ambili, T. R., y Manimekalan, A. (2012). In sillico analysis of the molecular phylogeny of Siluriformes inferred from mitochondrial CO1 gene. International Journal of Advanced Life Sciences, 5(1), 71–78. http://ijals.com/wp-content/uploads/2012/12/8.-In-sillico-analysis-of-the-molecualr-phylogeny-Ambili.pdf
dc.relationJiménez-Segura, L. F., Restrepo-Santamaría, D., López-Casas, S., Delgado, J., Valderrama, M., Álvarez, J., y Gómez, D. (2014). Ictiofauna y desarrollo del sector hidroeléctrico en la cuenca del río Magdalena-Cauca, Colombia. Biota Colombiana, 15(2), 3–25. http://repository.humboldt.org.co/bitstream/handle/20.500.11761/9452/Biota_152_Embalses_y_rios_regulados_Jul-dic-2014_Baja_2_p5-27.pdf?sequence=1&isAllowed=y
dc.relationKerr, K. C. R., Stoeckle, M. Y., Dove, C. J., Weigt, L. A., Francis, C. M., y Hebert, P. D. N. (2007). Comprehensive DNA barcode coverage of North American birds. Molecular Ecology Notes, 7(4), 535–543. https://doi.org/10.1111/j.1471-8286.2007.01670.x
dc.relationKimura, M. (1980). A simple method for estimating evolutionary rates of base substitutions through comparative studies of nucleotide sequences. Journal of Molecular Evolution, 16(2), 111–120. https://doi.org/10.1007/BF01731581
dc.relationKumar, S., Stecher, G., y Tamura, K. (2016). MEGA7: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 7.0 for Bigger Datasets. Molecular Biology and Evolution, 33(7), 1870–1874. https://doi.org/10.1093/molbev/msw054
dc.relationLandínez-García, R. M., Alzate, J. F., y Márquez, E. J. (2014). Complete mitogenome of the neotropical fish Brycon henni, Eigenmann 1913 (Characiformes, Bryconidae). Mitochondrial DNA Part A, 27(3), 2259–2260. https://doi.org/10.3109/19401736.2014.984170
dc.relationLenis, G. A., Restrepo, L. F., y Cruz-Casallas, P. E. (2009). Evaluación de tres protocolos de tratamiento hormonal sobre el diámetro de ovocitos de sabaleta Brycon henni. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 22(2), 131–142.
dc.relationLi, C., y Ortí, G. (2007). Molecular phylogeny of Clupeiformes (Actinopterygii) inferred from nuclear and mitochondrial DNA sequences. Molecular Phylogenetics and Evolution, 44(1), 386–398. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2006.10.030
dc.relationMaldonado-Ocampo, J. A., Ortega-Lara, A., Usma Oviedo, J. S., Galvis Vergara, G., Villa-Navarro, F. A., Vásquez Gamboa, L., Prada-Pedreros, S., Ardila Rodríguez, C., y Calle V., J. C. (2005). Peces de los Andes de Colombia. Instituto Humboldt Colombia.
dc.relationMohanty, M., Jayasankar, P., Sahoo, L., y Das, P. (2015). A comparative study of COI and 16S rRNA genes for DNA barcoding of cultivable carps in India. Mitochondrial DNA, 26(1), 79–87. https://doi.org/10.3109/19401736.2013.823172
dc.relationMojica, J. I., Usma, J. S., Álvarez-León, R., y Lasso, C. A. (Eds). (2012). Libro rojo de peces dulceacuícolas de Colombia 2012. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt, Instituto de Ciencias Naturales de la Universidad Nacional de Colombia, WWF Colombia y Universidad de Manizales.
dc.relationMontoya López, A. F., Carrillo, L. M., y Olivera Ángel, M. (2006). Algunos aspectos biológicos y del manejo en cautiverio de la sabaleta Brycon henni Eigenmann , 1913 (Pisces : Characidae). Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 19(2), 180–186.
dc.relationMoreno, L. T. (2018). La Pesca e los Pescadores Artesanales en Colombia. PEGADA - A Revista Da Geografia Do Trabalho, 19(2). https://doi.org/10.33026/peg.v19i2.5514
dc.relationOliveira, C., Avelino, G. S., Abe, K. T., Mariguela, T. C., Benine, R. C., Ortí, G., Vari, R. P., y Corrêa e Castro, R. M. (2011). Phylogenetic relationships within the speciose family Characidae (Teleostei: Ostariophysi: Characiformes) based on multilocus analysis and extensive ingroup sampling. BMC Evolutionary Biology, 11(1), 275. https://doi.org/10.1186/1471-2148-11-275
dc.relationPáiz-Medina, L., y Huete-Pérez, J. (2012). Filogenética molecular de peces del complejo Midas Cichlidae que habitan lagos y lagunas de Nicaragua, utilizando el gen COI. Encuentro, 93, 101–116. https://doi.org/10.5377/encuentro.v0i93.913
dc.relationPalumbi. (1996). Nucleic Acids II : The Polymerase Chain Reaction. Molecular Systematics, 205-247.
dc.relationPavlova, A., Beheregaray, L. B., Coleman, R., Gilligan, D., Harrisson, K. A., Ingram, B. A., Kearns, J., Lamb, A. M., Lintermans, M., Lyon, J., Nguyen, T. T. T., Sasaki, M., Tonkin, Z., Yen, J. D. L., y Sunnucks, P. (2017). Severe consequences of habitat fragmentation on genetic diversity of an endangered Australian freshwater fish: A call for assisted gene flow. Evolutionary Applications, 10, 531–550. https://doi.org/10.1111/eva.12484
dc.relationPaz, A., Gonzalez, M., y Crawford, A. J. (2011). DNA Barcode of Life: An Introduction and Perspective. Acta Biológica Colombiana, 16(3), 161–176. https://www.redalyc.org/pdf/3190/319027888011.pdf
dc.relationPereira, L. H., Hanner, R., Foresti, F., y Oliveira, C. (2013). Can DNA barcoding accurately discriminate megadiverse Neotropical freshwater fish fauna? BMC Genetics, 14(1), 20. https://doi.org/10.1186/1471-2156-14-20
dc.relationSchmitz, A., y Riesner, D. (2006). Purification of nucleic acids by selective precipitation with polyethylene glycol 6000. Analytical Biochemistry, 354(2), 311–313. https://doi.org/10.1016/j.ab.2006.03.014
dc.relationSullivan, J. P., Lundberg, J. G., y Hardman, M. (2006). A phylogenetic analysis of the major groups of catfishes (Teleostei: Siluriformes) using rag1 and rag2 nuclear gene sequences. Molecular Phylogenetics and Evolution, 41(3), 636–662. https://doi.org/10.1016/j.ympev.2006.05.044
dc.relationTempleton, A. R. (2004). Using haplotype trees for phylogeographic and species inference in fish populations. Environmental Biology of Fishes, 69, 7–20. https://doi.org/10.1023/B:EBFI.0000022870.76912.0c
dc.relationTognelli, M. F., Lasso, C. A., Bota-Sierra, C. A., Jiménez-Segura, L. F., Cox, N. A., y (Editores). (2016). Estado de conservación y distribución de la biodiversidad de agua dulce en los Andes tropicales. En Estado de conservación y distribución de la biodiversidad de agua dulce en los andes tropicales. Gland, Suiza, Cambridge, UK y Arlington, USA: UICN. https://doi.org/10.2305/IUCN.CH.2016.02.es
dc.relationTravenzoli, N. M., Silva, P. C., Santos, U., Zanuncio, J. C., Oliveira, C., y Dergam, J. A. (2015). Cytogenetic and Molecular Data Demonstrate that the Bryconinae (Ostariophysi, Bryconidae) Species from Southeastern Brazil Form a Phylogenetic and Phylogeographic Unit. Plos ONE, 10(9), e0137843. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0137843
dc.relationWard, R. D. (2012). FISH-BOL, A Case Study for DNA Barcodes. In: Kress W., Erickson D. (eds) DNA Barcodes. In Methods in Molecular Biology (Methods and Protocols) (Vol. 858, pp. 423–439). Humana Press. https://doi.org/10.1007/978-1-61779-591-6_21
dc.relationWard, Robert D., Zemlak, T. S., Innes, B. H., Last, P. R., y Hebert, P. D. N. (2005). DNA barcoding Australia’s fish species. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences, 360(1462), 1847–1857. https://doi.org/10.1098/rstb.2005.1716
dc.relationZapata-Restrepo, L. M., Orozco-Jiménez, L. Y., Rueda-Cardona, M., Echavarría, S. L., Mena-Moreno, N., y Palacio-Baena, J. A. (2017). Evaluación genotóxica del agua del río Grande (Antioquia, Colombia) mediante frecuencia de eritrocitos micronucleados de Brycon henni (Characiformes: Characidae). Revista de Biología Tropical, 65(1), 405-414.
dc.relationZhang, H., Zhang, Y., Zhang, Z., y Gao, T. (2013). DNA barcodes of eight species in genus Sebastes. Biochemical Systematics and Ecology, 48, 45–50. https://doi.org/10.1016/j.bse.2012.11.012
dc.relationZhang, J., y Hanner, R. (2012). Molecular approach to the identification of fish in the South China Sea. PLoS ONE, 7(2), 1–9. https://doi.org/10.1371/journal.pone.003062
dc.relationAguirre, W. E., y Jiménez-Prado, P. (2018). Guía práctica de morfometría geométrica. Aplicaciones en la ictiología. Pontificia Universidad Católica del Ecuador Sede Esmeraldas (PUCESE).
dc.relationAso Vizán, J. (2017). Morfometría craneofacial sobre ficheros DICOM. Aplicaciones en ciencias morfológicas, forenses y en cirugía reparadora. Universidad Complutense de Madrid. https://eprints.ucm.es/41109/1/T38348.pdf
dc.relationBenítez, H. A., y Püschel, T. A. (2014). Modelando la varianza de la forma: morfometría geométrica aplicaciones en biología evolutiva. International Journal of Morphology, 32, (3). 998-1008. https://dx.doi.org/10.4067/S0717-95022014000300041
dc.relationBonini‐Campos, B., Lofeu, L., Brandt, R., y Kohlsdorf, T. (2019). Different developmental environments reveal multitrait plastic responses in South American Anostomidae fish. Journal of Experimental Zoology Part B: Molecular and Developmental Evolution, 332(7), 238–244. https://doi.org/10.1002/jez.b.22905
dc.relationBotero-Botero, A., y Ramírez-Castro, H. (2011). Ecología trófica de la Sabaleta Brycon henni (Pisces: Characidae) en el río Portugal de Piedras, Alto Cauca, Colombia. Revista MVZ Córdoba, 16(1), 2349–2355.
dc.relationCala-Cala, P. (2019). Medio ambiente y diversidad de los peces de agua dulce de Colombia. Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales.
dc.relationCarvalho, F., y Galetti, P. (2008). Estudo da diversidade genética e Filogeografia do genero Pseudoplatystoma Bleeker, 1862 (Teleostei: Pimrlodidae) em diferentes bacias hidrograficas brasileiras. Doutorado. Unversidade Federal de Sao Carlos. Departamento de Genetica e Evolucao. Sao Carlos.
dc.relationCavalcanti, M. J., y Duarte, P. R. (2019). Geographic variation in Prionotus punctatus (Bloch) (Teleostei, Scorpaeniformes, Triglidae): a geometric morphometric analysis. Tropical Diversity, 1(2), 48–56.
dc.relationCocha, A. P. (2018). Análisis de la variación morfológica de Hoplias malabaricus ( Bloch 1794 ), asociada al tipo de hábitat utilizando morfometría geométrica. Universidad Central del Ecuador.
dc.relationCuadras, C. M. (2007). Nuevos métodos de análisis multivariante. CMC editions.
dc.relationDudgeon, D. (2012). Threats to freshwater biodiversity globally and in the Indo-Burma Biodiversity Hotspot. En: D.J. Allen, K.G. Smith, y W.R.T. Darwall (eds.), The Status and Distribution of Freshwater Biodiversity in Indo-Burma. Cambridge, UK and Gland. IUCN.
dc.relationEscanta- Molina, R., y Jiménez-Prado, P. (2019). Uso de la morfometría geométrica para establecer contrastes biológicos y ambientales en poblaciones de peces del río Teaone. Rev. Hallazgos21, 4(1), 55–69.
dc.relationEsquivel, M. A., Merino, M., Restrepo, J., Narváez, A., Polo, C., Plata, J., y Puentes, V. (2014). Estado de la pesca y la acuicultura en Colombia. Autoridad Nacional de Acuicultura y Pesca (AUNAP).
dc.relationFeulner, P. G. D., Kirschbaum, F., Mamonekene, V., Ketmaier, V., y Tiedemann, R. (2007). Adaptive radiation in African weakly electric fish (Teleostei: Mormyridae: Campylomormyrus): A combined molecular and morphological approach. Journal of Evolutionary Biology, 20(1), 403–414. https://doi.org/10.1111/j.1420-9101.2006.01181.x
dc.relationGarcía-Alzate, C. A., Román-Valencia, C., y González, M. I. (2010). Morfogeometría de los peces del género Hyphessobrycon (Characiformes: Characidae), grupo heterorhabdus, en Venezuela. Revista de Biología Tropical, 58(3), 801–811.
dc.relationGupta, D., Dwivedi, A. K., y Tripathi, M. (2018). Taxonomic validation of five fish species of subfamily Barbinae from the Ganga river system of northern India using traditional and truss analyses. PLoS One, 13(10). https://doi.org/10.1371/journal.pone.0206031
dc.relationIANAS. (2019). Water Quality in the Americas Risks and Opportunities. In Water quality in the Americas: Risks and opportunities. https://www.researchgate.net/publication/331839012
dc.relationJaramillo, N. (2011). Morfometría geométrica: principios teóricos y métodos de empleo. Fronteras de investigación en enfermedades infecciosas. Modelo enfermedad de Chagas. Universidad de Antioquia.
dc.relationKlingenberg, C. P. (2011). MorphoJ: An integrated software package for geometric morphometrics. Molecular Ecology Resources, 11(2), 353–357. https://doi.org/10.1111/j.1755-0998.2010.02924.x
dc.relationKlingenberg, C. P. (2013). Cranial integration and modularity: insights into evolution and development from morphometric data. Hystrix, the Italian Journal of Mammalogy, 24(1), 43-58. https://doi.org/10.4404/hystrix-24.1-6367
dc.relationLangerhans, R. B., Layman, C. A., Langerhans, A. K., y Dewitt, T. J. (2003). Habitat-associated morphological divergence in two Neotropical fish species. Biological Journal of the Linnean Society, 80(4), 689–698. https://doi.org/10.1111/j.1095-8312.2003.00266.x
dc.relationLostrom, S., Evans, J. P., Grierson, P. F., Collin, S. P., Davies, P. M., y Kelley, J. L. (2015). Linking stream ecology with morphological variability in a native freshwater fish from semi-arid Australia. Ecology and Evolution, 5(16), 3272–3287. https://doi.org/10.1002/ece3.1590
dc.relationMahalanobis, P. C. (1936). On the generalized distance in statistics. National Institute of Science of India., 2(1), 49–55.
dc.relationMaldonado-Ocampo, J. A., Ortega-Lara, A., Usma Oviedo, J. S., Galvis Vergara, G., Villa-Navarro, F. A., Vásquez Gamboa, L., … Calle V., J. C. (2005). Peces de los Andes de Colombia. Instituto Humboldt Colombia.
dc.relationMonteiro, L. R. (2013). Morphometrics and the comparative method: studying the evolution of biological shape. Hystrix, the Italian Journal of Mammalogy, 24(1), 25–32. https://doi.org/10.4404/hystrix-24.1-6282
dc.relationMontoya, A. F., Carrillo, L. M., y Olivera, M. (2006). Algunos aspectos biológicos y del manejo en cautiverio de la sabaleta Brycon henni Eigenmann, 1913 (Pisces: Characidae). Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias, 19(2), 180–186.
dc.relationMouludi-Saleh, A., Eagderi, S., Cicek, E., y Sungur, S. (2020). Morphological variation of Transcaucasian chub, Squalius turcicus in southern Caspian Sea basin using geometric morphometric technique. Biologia, 75, 1–6. https://doi.org/10.2478/s11756-019-00409-6
dc.relationNoriega, A. M. (2015). Caracterización de seis poblaciones parentales de tilapia roja Oreochromis spp . Universidad Nacional de Colombia.
dc.relationOCDE. (2016). La pesca y la acuicultura en Colombia.
dc.relationOliveira, C., Avelino, G. S., Abe, K. T., Mariguela, T. C., Benine, R. C., Ortí, G., Vari, R. P., y Corrêa e Castro, R. M. (2011). Phylogenetic relationships within the speciose family Characidae (Teleostei: Ostariophysi: Characiformes) based on multilocus analysis and extensive ingroup sampling. BMC Evolutionary Biology, 11(1), 275. https://doi.org/10.1186/1471-2148-11-275
dc.relationRestrepo-Escobar, N., Hurtado-Alarcón, J. C., Mancera-Rodríguez, N. J., y Márquez, E. J. (2016). Variations of body geometry in Brycon henni (Teleostei: Characiformes, Bryconidae) in different rivers and streams. Journal of Fish Biology, 89(1), 522–528. https://doi.org/10.1111/jfb.12971
dc.relationSchaefer, K., y Bookstein, F. L. (2009). Does geometric morphometrics serve the needs of plasticity research? Journal of Biosciences, 34(4), 589-599.
dc.relationToro, M. V., Manriquez, G., y Suazo, I. (2010). Morfometría geométrica y el estudio de las formas biológicas: de la morfología descriptiva a la morfología cuantitativa. International Journal of Morphology, 28(4), 977–990. https://doi.org/10.4067/s0717-95022010000400001
dc.relationZapata, L. A., y Usma, J. S. (2013). Guía de las especies migratorias de la biodiversidad en Colombia: peces. Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible / WWF-Colombia. http://awsassets.panda.org/downloads/migratoriaspeces_42_web_final.pdf
dc.relationZelditch, M. L., Swiderski, D. L., y Sheets, H. D. (2012). Geometric morphometrics for biologists: a primer. Academic Press. https://doi.org/10.1016/B978-0-12-386903-6.00001-0
dc.rightsAtribución-NoComercial 4.0 Internacional
dc.rightsAcceso abierto
dc.rightshttp://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
dc.rightsinfo:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rightsDerechos reservados - Universidad Nacional de Colombia
dc.titleCaracterización genómica y fenotípica de la especie Brycon henni (Characiformes: Characidae) en cuencas hidrográficas de los ríos Yotoco, Sonso, Guabas y Sabaletas
dc.typeDocumentos de trabajo


Este ítem pertenece a la siguiente institución