Evaluación de la viabilidad de polen de fríjol caupí (Vigna unguiculata L. Walp), en diferentes tiempo y condiciones de almacenamiento

dc.contributorAraméndiz Tatis, Hermes
dc.creatorQuiñónez Arrieta, Leidys Lorena
dc.creatorSilva Vega, Yulissa Fernanda
dc.date2020-11-03T21:36:12Z
dc.date2020-11-03T21:36:12Z
dc.date2020-11-03
dc.date.accessioned2023-09-06T21:54:39Z
dc.date.available2023-09-06T21:54:39Z
dc.identifierhttps://repositorio.unicordoba.edu.co/handle/ucordoba/3488
dc.identifier.urihttps://repositorioslatinoamericanos.uchile.cl/handle/2250/8710113
dc.descriptionCowpea bean is a crop of social, economic and nutritional importance of the Colombian Caribbean, which according to some reports, has been affected in its yield, due to environmental changes especially high temperatures, which are increasing with the passing of the times. These fluctuations can cause negative effects on cowpea bean crop pollen viability. This research was carried out at Universidad de Córdoba aiming to evaluate the viability of pollen from three cowpea bean cultivars collected at different hours (6.00, 8: 00, 10: 00 and 12:00) and to determine the effect of different environments (fridge and cold-room, 1,1 ±0,5°C y RH 68% y 5,6 ± 1,0°C y RH 48%),) on pollen viability storaged for 6 and 12 days, which was determined by using staining methods with 1% Acetocarmín and 3% tetrazolium. Pollen was obtained from the collection of flower buds in anthesis in which temperature and relative humidity records were taken at the time of each sampling, using a using a completely randomized experimental design with a factorial arrangement of three factors; 2 (storage conditions), 3 (conservation times) 3 (genotypes), with four repetitions for pollen conservation. Regarding the time of collection, it was used a completely randomized experimental design with a factorial arrangement of two factors; 4 (hours of collection) and 3 (genotypes) for a total of 12 treatments, with four repetitions. The results stated that storage conditions do not impact pollen viability. As a matter of fact, conservation time and each genotype pollen features do influence its viability. With acetocarmin test were obtained the highest percentage of viable pollen (90%), in contrast with tetrazolium test, which was 70% where the pollen collection time did not affect its viability
dc.descriptionINTRODUCCIÓN ................................................................................................... 15
dc.description1. OBJETIVOS ....................................................................................................... 18
dc.description1.1. OBJETIVO GENERAL .................................................................................... 18
dc.description1.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS ........................................................................... 18
dc.description2. HIPÓTESIS ........................................................................................................ 19
dc.description3. REVISIÓN DE LITERATURA ............................................................................. 20
dc.description3.1. GENERALIDADES DE LA ESPECIE............................................................... 20
dc.description3.2. ORIGEN E IMPORTANCIA ECONÓMICA DEL FRIJOL CAUPÍ ......................... 20
dc.description3.3. IMPORTANCIA SOCIAL ................................................................................. 21
dc.description3.4. FACTORES QUE INCIDEN EN LA FLORACIÓN DEL CULTIVO ....................... 22
dc.description3.5. FACTORES QUE AFECTAN LA VIABILIDAD DEL POLEN ................................... 23
dc.description3.6. BIOLOGÍA FLORAL ........................................................................................ 24
dc.description3.7. MORFOLOGÍA DE LOS GRANOS DE POLEN ............................................... 25
dc.description3.8. ALMACENAMIENTO DEL POLEN .................................................................. 26
dc.description3.9. ESTUDIOS RELACIONADOS CON LA VIABILIDAD DEL POLEN .................. 27
dc.description4. MATERIALES Y MÉTODOS .............................................................................. 29
dc.description4.1. LOCALIZACIÓN .............................................................................................. 29
dc.description4.2. MATERIALES ................................................................................................. 29
dc.description4.3. MÉTODOS ...................................................................................................... 30
dc.description4.3.1. Viabilidad del polen en función de la hora de colecta .................................. 30
dc.description4.3.2. Efecto del almacenamiento en la viabilidad del polen .................................. 33
dc.description5. RESULTADOS Y DISCUSIÓN .......................................................................... 37
dc.description5.1. VIABILIDAD DEL POLEN EN FUNCIÓN DE LA HORA DE COLECTA ........... 37
dc.description5.2. EFECTO DEL TIEMPO DE ALMACENAMIENTO EN LA VIABILIDAD DEL POLEN ................................................................................................................... 44
dc.description6. CONCLUSIONES .............................................................................................. 56
dc.descriptionREFERENCIAS ..................................................................................................... 57
dc.descriptionEl fríjol caupí es un cultivo de importancia social, económica y alimenticia del Caribe colombiano, el cual según reportes se ha visto afectado actualmente en sus rendimientos, por cambios en los factores ambientales, especialmente por altas temperaturas que van en aumento con el pasar de los tiempos; dichas variaciones pueden causar efectos negativos en la viabilidad polínica de estas plantas. La presente investigación se llevó a cabo en la Universidad de Córdoba, la cual tuvo como objetivo evaluar la viabilidad de polen de tres cultivares de frijol caupí, colectado en diferentes horas del día (6:00, 8:00,10:00am y 12:00m) y determinar el efecto de diferentes ambientes nevera y cuarto frio 1,1 ±0,5°C y HR 68% y 5,6 ± 1,0°C y HR 48%), en la viabilidad de polen, conservado por 6 y 12 días, la cual se evaluó, mediante el uso de métodos de tinción con acetocarmín al 1% y sal de tetrazolio al 3%. El polen se obtuvo de la colecta de botones florales en antesis en el cual se tomaron registros de temperatura y humedad relativa al momento de cada muestreo, utilizando un diseño experimental completamente al azar con arreglo factorial de tres factores; 2 (condiciones de almacenamientos), 3 (tiempos de conservación) y 3 (genotipos) con cuatro repeticiones para la conservación del polen, en cuanto a la hora indicada de colecta se utilizó un diseño completamente al azar con arreglo factorial de dos factores 4 (horas de colecta) y 3 (genotipos), para un total de 12 tratamientos, con cuatro repeticiones. Los resultados muestran que las condiciones de almacenamiento no afectaron la viabilidad de polen, por el contrario, el tiempo de conservación y las características del polen de cada genotipo ejercieron influencia en su viabilidad; con la prueba de acetocarmín se obtuvieron los valores más altos para porcentaje de polen viable (90%), en contraste con la prueba de tetrazolio el cual fue de un 70% donde la hora de colecta del polen no afectó su viabilidad.
dc.descriptionPregrado
dc.descriptionIngeniero(a) Agronómico(a)
dc.descriptionTrabajo de Investigación y/o Extensión
dc.formatapplication/pdf
dc.formatapplication/pdf
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dc.languagespa
dc.publisherUniversidad de Córdoba
dc.publisherFacultad de Ciencias Agrícolas
dc.publisherMontería, Córdoba, Colombia
dc.publisherIngeniería Agronómica
dc.relationAlminate, G. F. (2017) Evaluación in vitro de la germinación y viabilidad del polen de segregantes de tomate de árbol (solanum betaceum Cav) en función del tiempo de almacenamiento (tesis de pregrado) Universidad de las Américas, Quito
dc.relationAraméndiz, H., Espitia, M., y Sierra, C. (2011). Comportamiento Agronómico de líneas promisorias de frijol caupí (Vigna unguiculata L. Walp) en el valle del Sinú. Revista Temas Agrarios, 16(2), 9-17 Recuperado de: http://revistas.unicordoba.edu.co/index.php/temasagrarios/article/view/687
dc.relationAraméndiz, H., Cardona-Ayala, C., y Jarma-Orozco, A. (2013). Efficiency of two methods for eggplant (Solanum melongena L. Cv. Lila criolla) pollen viability evaluation. Revista UDCA Actualidad & Divulgación Científica, 16(2), 351-358.
dc.relationAraméndiz, H., Cardona, C., y Combatt, E. (2016). Contenido Nutricional de Líneas de Fríjol Caupí (Vigna unguiculata L. Walp.) Seleccionadas de una Población Criolla. Información Tecnológica, 27(2), 53-60. Doi: 10.4067/S0718-07642016000200007
dc.relationArnaud, F. (1979). La polinización ayudó a las plantaciones de palmier à huile. Retorno y condición del polen. Oléagineux, París, 34 (2), 175-176.
dc.relationBarbosa, M., y Sousa, E. (2016). Biologia floral, ecologia da polinização e eficiência na produção de sementes de feijão macassar (Vigna unguiculata (L.) Walp.) em sistemas agrícolas. Gaia Scientia 10(4), 272 – 283. Recuperado de: https://repositorio.ufpb.br/jspui/handle/123456789/3974
dc.relationBarbosa, M. (2015). Biologia floral, ecologia da polinização e eficiência na produção de sementes de Vigna unguiculata (L.) Walp (tesis de maestría). Universidade Federal da Paraíba, Brasil
dc.relationBáez, A., y Hernández, C. (2016). Estudio del rendimiento de cultivares de frijol caupí (Vigna unguiculata L. Walp.) en diferentes épocas de siembra en Camajuani, Cuba. Revista de Ciencia y Tecnología. 18(1).
dc.relationBaéz, P., Riveros, M. & lehnebach, C. (2002). Viability and longevity of pollen of Nothofagus species in south Chile. New Zealand Journal of Botany 40:671- 678. https://doi.org/10.1080/0028825X.2002.9512822
dc.relationBaltazar, B. M., & Schoper, J. B. (2002, October). Crop-to-crop gene flow: dispersal of transgenes in maize during field tests and commercialization. In 7th International Symposium on the Biosafety of Genetically Modified Organisms (pp. 10-16).
dc.relationBernard, G., y Noiret, J. M. (1970). Le polen de palmier à huile réclote. Precondición, condición y uso para la fe artificial. Oléagineux, París. 25(2) p. 67-73.
dc.relationBrito, V., Garcia, D., Pinheiro, M., y Sazima, M. (2010). Sophora tomentosa e Crotalaria vitellina (Fabaceae): Biologia reprodutiva e interações com abelhas na restinga de Ubatuba, São Paulo. Biota Neotropical, 10(1), 185-192. http://dx.doi.org/10.1590/S1676-06032010000100019
dc.relationBrown, C. R., Yang, C. P., Wiatkowski, K., y Adiwilaga, K. D. (1991). Insert cry number, chromosome number, pollen stainability, and crossability of Agrobacterium transformed diploid potato. Am. Pot. Journal, 68, 813- 820. https://doi.org/10.1007/BF02853669
dc.relationBots, M., y Mariani, C. (2005). Pollen viability in the field. COGEM report, Radboud Universiteit Nijmegen, Netherlands.
dc.relationCárdenas, L. F. (2003). Almacenamiento de Polen de Guanábano (Annona Muricata L.) Colombia Forestal, 8 (16), 121-125. https://doi.org/10.14483/udistrital.jour.colomb.for.2003.1.a10
dc.relationCardona, C., Araméndiz, H., y Jarma, A. (2013). Variabilidad genetica en lineas de Frijol Caupí (Vigna unguiculata (L.) Walp.) Revista Agronomía. 21(2), 7-18, 2013.
dc.relationCabeza, R. C., Escobar, I. H., Zayas, I. U., Robaina, F. R., Gil, M. E. D., Dubergel, E. F., Veranes, C. S., Polón, R., Galan, R. T., Cardoso, B. M., Lorenzo, J. P. A., y Goónzales, G. C. J. (2018). El cultivo de algunas legumbres para la producción local de alimentos y la mitigación del cambio climático PARTE I. El cultivo del fríjol carita o caupí (Vigna unguiculata Lin). Anuario Ciencia en la UNAH, 16(1).
dc.relationCrespo, S., Rivera, M., Rosero, D. A., Muñoz, J. E., Rao, I. M., y Muñoz, L C. (2018). Pollen viability of Tepary bean (Phaseolus acutifolius A. Gray.) mutant lines under water stress conditions and inoculation with rhizobia. Acta Agron. 67(2), 319-325. http://dx.doi.org/10.15446/acag.v67n2.57704
dc.relationChiquillo, S. (2017). Producción y comercialización de Frijol caupí (Vigna unguiculata L. Walp.) tecnificado como modelo demostrativo en el municipio de Guaranda Sucre. (Tesis Ingeniero) Agrónomo, Universidad de la Salle, Yopal- Casanare.
dc.relationCoelho, A. P., Morales, K. P., Laughinghouse IV, H. D., Giacomini, S. J., y Tadesco, S. B. (2012). Viabilidad del grano de polen en accesiones de Crotalaria juncea L. (Fabaceae) Agrociencia 46 (5), 481-487. Recuperado de: https://ciencia.lasalle.edu.co/ingenieria_agronomica
dc.relationDafni, A., Firmage, D. (2000) Pollen viability and longevity: Practical, ecological and evolutionary implications. Plant Systematics and Evolution 222: 113-132 https://doi.org/10.1007/978-3-7091-6306-1_6
dc.relationDafni, A. (1992). Pollination Ecology. A practical Aproach. The Practical Approach Series. IRLPRESS, Oxford University, New York, United States. DOI: 19930320215
dc.relationDe Assis, J. P., y Freitas, L. (2008). Reproductive biology of two tree species of Leguminosae in a Montane Rain Forest in southeastern Brazil. Flora-Morphology, Distribution, Functional Ecology of Plants, 203(6), 491-498. https://doi.org/10.1016/j.flora.2007.10.002
dc.relationDelgado, A., Martínez, E., y Fernández, P. (1982). A study of the polen of Phaseolus chiapasanus Piper (Leguminosae, Phaseolinae). Botanical Sciences, 43, 25-34. https://doi.org/10.17129/botsci.1265
dc.relationDerin, K., y Eti, S. (1999). Sera Domateslerinde Çiçek Tozu Çim Borusu Büyümesi, Mikrosporogenesis Aşaması ve Embriyo Gelişiminin İncelenmesi. Ç. Ü. Zir. Fak. Dergisi, 14 (4):99-104
dc.relationDevi, C. B., Kushwaha, A., y Kumar, A. (2015). Sprouting characteristics and associated changes in nutritional composition of cowpea (Vigna unguiculata). Ind. J. Food Sci. Technol. 52(10), 6821-6827. https://doi.org/10.1007/s13197-015-1832-1
dc.relationDiamantino, M. S., Costa, M. A., Soares, T. L., Morais, D. V., Silva, S. A., y Sousa, E. H. (2016). Morphology and viability of castor bean genotypes pollen grains. Acta Scientiarum, 36(1), 77-83. https://doi.org/10.4025/actasciagron.v38i1.25981
dc.relationDomínguez, J., J. (2014) Germinabilidad y viabilidad del polen de cuatro cultivares mejorados de palma aceitera bajo condiciones de laboratorio (tesis de pregrado) Universidad de Nariño, San juan de Pasto Colombia
dc.relationDowel, I. M,. y Hall, A. E. (1986). Floweringofcontrasting cowpea (Vigna unguiculata [L.] Walp.) genotypes under different temperatures and photoperiods. Field Crop Research 14: 87-104. https://doi.org/10.1016/0378-4290(86)90049-3
dc.relationEhlers, J. D., y Hall, A. E. (1998). Heat tolerance of contrasting copwea lines in short and long days. Field Crops Research 55(1), 11 – 21. https://doi.org/10.1016/S0378-4290(97)00055-5
dc.relationFAOSTAT. (2019). Estadísticas de frijol caupi, Recuperada 1 noviembre 2019, de: http://www.fao.org/faostat/es/#data/QC
dc.relationFAOSTAT. (2018) Producción/Rendimiento de Frijol en Colombia, Recuperada 20 agosto 2019 de http://www.fao.org/faostat/es/#data/QC/visualize
dc.relationFAO. (2018). Legumbres. Pequeñas semillas, grandes soluciones. Ciudad de Panamá. 292 páginas
dc.relationFAO. (2019). Frijol. Dirección de Cadenas Agrícolas y Forestales ciudad de Colombia. 24 paginas
dc.relationFernández, E. (2013). Efectos del cambio climático en la producción y rendimento de cultivos por sectores. FONADE-IDEAM. 47p. http://ideam.gov.co (consultado 09-05-2019)
dc.relationFernández, R. F. (1990). Fructificación a bajas temperaturas en Lycopersicon M. (Tesis de grado). Universidad de Málaga, España, 228 p
dc.relationEspinoza, E. A. (2009). Eavaluacion de 16 genotipos selescionados de dos densidades de siembra de frijol canario cv. Centenario (phaseolus vulgaris L.) por 62 su calidad y rendimiento en condiciones de costa central. (Tesis de magister scientiae) Universidad Agraria La Molina, Lima – Perú, 179 p
dc.relationGriggs, W., Vansell, G., y Reinhardt, J. (1950). The germinating ability of quick-frozen, bee-collected apple pollen stored in a dry ice container. J. of Ecomonic Entomology 43(4), 549. DOI: 10.1093/jee/43.4.549
dc.relationGonzález, M. A., Estévez, J., Castillo, J., Salomón, O., Moré, M., y Hernández. (2002). La Calidad del polen: requisito indispensable del mejoramiento tradicional de la papa en Cuba. Revista Latinoamericana de la Papa 13(1), 75-94. https://doi.org/10.37066/ralap.v13i1.124
dc.relationGonzález, M. E., Estévez, A., Rodríguez, T., y Álvarez, M. (1992) Estudio de la fertilidad del polen en especies de papa. Cultivos Tropicales, 13(1), 70-73.
dc.relationGonzález, M., Castro, R., Morrejon, R., y Cárdenas, R. M. (2004). Relación del vaneo del grano en variedades de arroz (Oryza Sativa L,) con las variables climáticas temperatura y humedad relativa. Cultivos Tropicales, 25(3), 15-17
dc.relationGutiérrez, J. F., y Gómez, W. (2015). Respuesta fisiológica del frijol caupi Vigna unguiculata L., utilizado como abono verde en cultivo asociado con caña de azúcar Saccharum officinarum L., en suelos Pachic Haplustolls del municipio El Cerrito-Valle del Cauca.
dc.relationHalbritter, H., Ulrich, S., Grímsson, F., Weber, M., Zetter, R., Hesse, M., Buchner, R., Svojtka y Frosch-Radivo, A. (2018). Illustrated pollen terminology. Springer.
dc.relationHernández, I. M. (2010) Evaluación de la viabilidad del polen almacenado de genotipos de arándano (Vaccinium spp.) (Tesis de pregrado) Universidad de Florida, Zamorano, Honduras
dc.relationHorn, L., Shimelis, H., Sarsu, F., Mwadzingeni, L., y Laing, M. D. (2018). Genotype-by-environment interaction for grain yield among novel cowpea (Vigna 63 unguiculata L.) selections derived by gamma irradiation. The Crop Journal, 6(3), 306-313. https://doi.org/10.1016/j.cj.2017.10.002
dc.relationIge, O. E., Olotuah, O. F., y Akerele, V. (2011). Floral Biology and Pollination Ecology of Cowpea (Vigna Unguiculata L. Walp). Modern Applied Science, 5(4), 74. Doi:10.5539/mas.v5n4p74
dc.relationJiang, Y., Lahlali, R., Karunakaran, C., Warkentin, T. D., Davis, A. R., & Bueckert, R. A. (2019). Pollen, ovules, and pollination in pea- Success, failure, and resilience in heat. Plant, cell & environment, 42(1), 354-372. https://doi.org/10.1111/pce.13427
dc.relationJahier, J., Chevre, A. M., Eber, F., Deldurme, R., y CorTanguy, A. M. (1992). Techniques de citogénétique vegétale. Paris: INRA, 184p.
dc.relationJayathilake, C., Visvanathan, R., Deen, A., Bangamuwage, R., Jayawardana, B. C., Nammi, S., y Liyanage, R. (2018). Caupí: una descripción general de sus datos nutricionales y beneficios para la salud. Revista de la Ciencia de la Alimentación y la Agricultura, 98 (13), 4793-4806.
dc.relationJohri, B. M., y VasiL I, K., (1961). Physiology of pollen. The Botanical Review 27(3), 325-381.
dc.relationKing, J. R. (1961) The freeze- drying of pollens. Economic Botany. 15(1), 91-98. DOI: 10.2307/4252219
dc.relationKoubouris, G. C., Metzidakis, I. T., y Vasilakakis, M. D. (2009). Impact of temperature on olive (Olea europaea L.) pollen performance in relation to relative humidity and genotype. Environmental and Experimental Botany, 67(1), 209-214. https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2009.06.002
dc.relationKowalczyk, K., Kobryń, J., y Zieliński, W. (2008). Evaluation of pollen fertility in pepino (Solanum muricatum Ait.). Folia Horticulturae, 20 (1), 43-59. https://doi.org/10.2478/fhort-2013-0105
dc.relationLavia, G. I., Ortiz, A. M., Cabaña Fader, A. A., y Seijo, G. (2005). Estudios citogenéticas en Arachis glabrata Benth. RN, 12(9), 6.
dc.relationLima, J. R. S.; Antonino, A. C. D.; Soares, W. A.; Silva, I. F. (2006) Estimativa da evapotranspiração do feijão-caupi utilizando o modelo de Penman-Monteith, v.11.477-491 pp. https://doi.org/10.15809/irriga.2006v11n4p477-491
dc.relationLiskens, H. F., (1964). Pollen physiology. A. Rev. Pl. Physiol. 15, 255-270.
dc.relationLora J., Herrero M., y Hormaza J, I., (2009) The coexistence of bicellular and tricellular pollen in Annona cherimola (Annonaceae): Implications for pollen evolution American Journal of Botany 96(4), 802-808. https://doi.org/10.3732/ajb.0800167
dc.relationMartins, E. S., Davide, L. M. C., Miranda, G. J., Barizon, J. D. O., Souza Junior, F. D. A., Carvalho, R. P. D., & Gonçalves, M. C. (2017). In vitro pollen viability of maize cultivars at different times of collection. Ciência Rural, 47(2), 8p. ISSN: 1678-4596. https://doi.org/10.1590/0103-8478cr20151077
dc.relationMatos Filho, C. H. A., Gomes, R. L. F., Rocha, M. M., Freire Filho, F. R., y Lopes, Â. C. D. A. (2009). Potencial produtivo de progênies de feijão-caupi com arquitetura ereta de planta. Ciência Rural, 39(2), 348-354. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782009000200006
dc.relationMoura., Catrine Regina Feitosa, Machado, Caroline de Araújo, y Lédo, Ana da Silva. (2015). In vitro germination and viability of pollen grain of coconut accessions1. Revista Ciência Agronômica, 46(2), 421-427. https://dx.doi.org/10.5935/1806-6690.20150022
dc.relationMesihovic A., Iannacone R., Firon N., y Fragkostefanakis S. (2016). Heat stress regimes for the investigation of pollen thermotolerance in crop plants. Plant Reproduction 29: 93-105. https://doi.org/10.1007/s00497-016-0281-y
dc.relationNogueira, P. V., Silva, D., Pío, R., Silva, P., Bisi, R. y Balbi, R. (2015). Germinação de pólen e aplicação de ácido bórico em botões florais de nespereiras. Bragantia, 74 (1), 9-15. https://doi.org/10.1590/1678-4499.0264
dc.relationNunes, R. C., Bustamante, F. O., Techio, V. L. y Mittelmann, A. (2012). Morphology and pollen viability of Lolium multiflorum Lam. Ciênc. agrotec., Lavras, 36 (2): 180 -188. https://doi.org/10.1590/S1413-70542012000200006
dc.relationNepi M., Franchi G. G, Pacini, E. (2001) Pollen hydration status at dispersal: cytophysiological features and strategies. Protoplasma 216: 171-180. https://doi.org/10.1007/BF02673869
dc.relationOjehomon, O. O. (1968) Effect of continuous removal of open flower on the seed yield of two varirties of cowpea, (Vigna unguiculataLin . Walp). j .AgrSci . Camb, vol.74 no.375. 81 p. https://doi.org/10.1017/S0021859600023017
dc.relationPalencia, G., Mercado, T., y Combatt, E. (2006). Estudio agrometeorológico del Departamento de Córdoba. Facultad de Ciencias Agrícolas, Universidad de Córdoba; Gráficas del Caribe, Montería, Colombia.
dc.relationPalacios, A. A. (2015) Evaluación de la etapa del despunte y del número de plantas por golpe sobre la producción de frijol caupi (vigna unguiculata l. walp) en el valle del medio piura (Tesis de pregrado) Universidad Nacional De Piura, Piura, Perú http://repositorio.unp.edu.pe/handle/UNP/391
dc.relationPatriyawaty, N. R.; Rachaputi, R. C.; George, D.; Douglas, C. (2018). Genotypic variability for tolerance to high temperatura stress at reproductive phase in mugbean (Vigna radiata (L.) Wilczek). Scientia horticulturae 227, 132-141. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2017.09.017
dc.relationPatel, P. N., y Hall, A., E. (1990). Genotypic variation and classification ofcowpea for reproductive responses to high temperatures under long photoperiods. Crop Science 30: 614-621. https://doi.org/10.2135/cropsci1990.0011183X003000030029x
dc.relationReddy, K. R., Kakani, V. G. (2007).Screening Capsicum species of different origins for high temperatura tolerance by in itro pollen germination and pollen tuve lenght. Scientia horticulturae, 111,130-135. https://doi.org/10.1016/j.scienta.2006.12.014
dc.relationRodríguez, T. J., Andrade, M., Canul-Ku, J., Castillo, A., Martínez, E., y Guillén, D. (2015). Viabilidad de polen, receptividad del estigma y tipo de polinización en cinco especies Echeveria en condiciones de invernadero. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 6(1), 111-123.
dc.relationSage,T. L., Bagha, S., Lundsgaard-Nielsen, V., Branch, H. A., Sultmanis, S., Sage, R. F. (2015). The effect of high temperature stress on male and female reproduction in plants. Field Crops Research, 182, 30-42. https://doi.org/10.1016/j.fcr.2015.06.011
dc.relationSarmiento, (1995). Evaluación de la densidad de siembra en el Cultivo de Pallar (Phaseolus lunatus L) cv. I – 1548 conducidos en espaldera en la Molina. Tesis Ing. Agrónomo. Lima – Perú. 90 pp.
dc.relationSangu, E., Tibazarwa, F. I., Nyomora, A., Symonds, R. C. (2015). Expression of genes for the biosynthesis of compatible solutes during pollen development under 67 heat strees in tomato. Journal of Plant Physiology, 178, 10-16. https://doi.org/10.1016/j.jplph.2015.02.002
dc.relationSato, S., Katoh, N., Iwai, S., y Hagimori, M. (1998). Establishment of reliable methods of in vitro pollen germination and pollen preservation of Brassica rapa (syn. B. campestris). Euphytica, 103 (1), 29–33. https://doi.org/10.1023/A:1018381417657
dc.relationStanley R. G., y Linskens, H. F. (1974) Pollen. Springer-Verlag, Berlin Heidelberg New York, 777-780. P
dc.relationShivanna K. R., y Rangaswamy, N, S. (1992) Biología del polen: un manual de laboratorio. Springer, Berlín. 118. P
dc.relationStapleton A. E., y Walbot, V. (1994) Flavonoids Can Protect Maize DNA from the Induction of Ultraviolet Radiation Damage. Plant Physiology 105: 881-889. https://doi.org/10.1104/pp.105.3.881
dc.relationSingh, S. K.; Kakani, V.G.; Kumar-Surabbi, G.; Reddy, K. (2010). Cowpea (Vigna unguiculata (L.) Walp) genotypes response to multiple abiotic stresses. Journal of Photochemistry and Photobiology: Biology, 100, 135-146. https://doi.org/10.1016/j.jphotobiol.2010.05.013
dc.relationSouza, M. D., Pereira, T. N., y Martins, E, R. (2002). Microsporogênese e microgametogênese associadas ao tamanho do botão floral e da antera e viabilidade polínica em maracujazeiro-amarelo (Passiflora edulis Sims f. flavicarpa Degener). Ciência e agrotecnologia, 26(6), 1209-1217.
dc.relationTanner, G. J., Piecirilli, A. E., Moore, P. J., Lardin, S., y Arcioni. (1990). Initiation of non-physiological division in cultured microspores of Medicago sp. Protoplasm. 158, 165-167. https://doi.org/10.1007/BF01323129
dc.relationVentura, K., y Huamán, L. (2008). Morfología polínica de la familia fabaceae de la parte de baja de los valles de pativilca y fortaleza (lima-perú). The Biologist, 6(2), 112-134.s. http://dx.doi.org/10.24039/rtb200862534
dc.relationWang, B. S., Charest P. J., y Downie, B. (2009) Ex Situ Storage of Seeds, Pollen and in Vitro Cultures of perennial woody plant species. Food and Agriculture organization of the United Nations.
dc.relationWarrag, M. O. A., y Hall, A. E. (1984). Reproductive responses of cowpea (Vigna unguiculata [L.] Walp.) to heat stress. II. Responses to night air temperature. Field Crop Research 8: 17-33. https://doi.org/10.1016/0378-4290(84)90049-2
dc.relationYeamans, R. L.; Roulston, T. H., y Carr, D. E. (2014). Pollen quality for pollinators tracks pollen quality for plants in Mimulus guttatus. Ecosphere 5(7), 91-98. http://dx.doi.org/10.1890/ ES14-00099.1
dc.rightsCopyright Universidad de Córdoba, 2020
dc.rightshttps://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/
dc.rightsinfo:eu-repo/semantics/restrictedAccess
dc.rightsAtribución-NoComercial 4.0 Internacional (CC BY-NC 4.0)
dc.subjectFrijol caupí
dc.subjectPrueba de acetocarmín
dc.subjectPrueba de tetrazolio
dc.subjectCowpea bean
dc.subjectAcetocarmin test
dc.subjectTetrazolium test
dc.titleEvaluación de la viabilidad de polen de fríjol caupí (Vigna unguiculata L. Walp), en diferentes tiempo y condiciones de almacenamiento
dc.typeTrabajo de grado - Pregrado
dc.typeinfo:eu-repo/semantics/bachelorThesis
dc.typehttp://purl.org/coar/resource_type/c_7a1f
dc.typeinfo:eu-repo/semantics/publishedVersion
dc.typeText
dc.typehttps://purl.org/redcol/resource_type/TP


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