dc.contributorFlórez-Castillo, Johana Marcela
dc.contributorRopero-Vega, Jose Luis
dc.contributorRueda-Forero, Nohora Juliana
dc.contributorFarfan-Garcia, Ana Elvira
dc.contributorNANOBIOT
dc.creatorMorales-Luna, Santiago Andrés
dc.date.accessioned2023-03-10T21:56:11Z
dc.date.accessioned2023-09-06T18:59:40Z
dc.date.available2023-03-10T21:56:11Z
dc.date.available2023-09-06T18:59:40Z
dc.date.created2023-03-10T21:56:11Z
dc.date.issued2022-11-21
dc.identifierUniversidad de Santander
dc.identifierT 33.22 M671d
dc.identifierRepositorio Digital Universidad de Santander
dc.identifierhttps://repositorio.udes.edu.co
dc.identifierhttps://repositorio.udes.edu.co/handle/001/8159
dc.identifier.urihttps://repositorioslatinoamericanos.uchile.cl/handle/2250/8701341
dc.description.abstractLos péptidos antimicrobianos (PAM) se han convertido en una alternativa promisoria para el tratamiento de enfermedades infecciosas a nivel mundial, teniendo en cuenta la generación de resistencia antimicrobiana (RAM) por microorganismos como Staphylococcus aureus y Candida albicans. Los PAM son en el objetivo principal de múltiples investigadores, teniendo en cuenta que son moléculas efectoras de la inmunidad innata, la mayoría poseen carga positiva, actividad anfipática, antimicrobiana, poseen baja citotoxicidad y se ha logrado demostrar que la gran mayoría interaccionan con la membrana celular de los microorganismos y con ello se perturba la generación de RAM. La familia de péptidos Ib-M, han sido utilizados desde 2014 por Flórez y Colaboradores en diversos estudios en donde se ha demostrado que poseen alta hidrofobicidad, un bajo efecto hemolítico y citotóxico y una carga de +6. Adicionalmente, se ha demostrado que son activos frente a cepas de Escherichia coli, O157:H7 y K-12 No patógena, en donde radica la importancia de verificar la actividad antimicrobiana frente a otros microorganismos. La metodología utilizada para la determinación de la CMI fue la técnica Microdilución descrita por la CLSI de 2018 en los protocolos M07-A9 para Staphylococcus aureus y M27-A3 para Candida albicans, en donde se construyen cinéticas de crecimiento basadas en valores de absorbancia. Adicionalmente se verifico la reproducibilidad del método bajo la técnica Difusión en disco, en donde el péptido no difunde correctamente en el disco por variables no diferenciales. Finalmente se encontró que los péptidos Ib-M, 1, 2 y 6 tienen una CMI de 50 µM frente a S. aureus, en 24 horas de prueba. Por otro lado, se precisa un CMI de 25 µM para el Ib-M (2 y 6) y de 100 µM para el Ib-M1 hasta las 24 horas de prueba, en un tiempo total de incubación de 48 horas.
dc.description.abstractAntimicrobial peptides (AMP) have become a promising alternative for the treatment of infectious diseases worldwide, considering the generation of antimicrobial resistance by microorganisms such as Staphylococcus aureus and Candida albicans. AMPs are the main objective of multiple researchers, considering that they are effector molecules of innate immunity, most of them have a positive charge, amphipathic, antimicrobial activity, low cytotoxicity and it has been demonstrated that the vast majority interact with the membrane. of microorganisms and thereby disturbs the generation of antimicrobial resistance. The Ib-M family of peptides have been used since 2014 by Flórez and Collaborators in various studies where it has been shown that they have high hydrophobicity, a low hemolytic and cytotoxic effect, and a charge of +6. Additionally, it has been shown that they are active against strains of Escherichia coli, O157:H7 and K-12 Non-pathogenic, where the importance of verifying the antimicrobial activity against other microorganisms lies. The methodology used to determine the MIC was the Microdilution technique described by the 2018 CLSI in protocols M07-A9 for Staphylococcus aureus and M27-A3 for Candida albicans, where growth kinetics are constructed based on absorbance values. Additionally, the reproducibility of the method was verified under the disk diffusion technique, where the peptide does not diffuse correctly in the disk due to non-differential variables. Finally, peptides Ib-M, 1, 2 and 6 were found to have an MIC of 50 µM against S. aureus, in 24 hours of testing. On the other hand, a MIC of 25 µM is required for Ib-M (2 and 6) and 100 µM for Ib-M1 up to 24 hours of testing, in a total incubation time of 48 hours.
dc.languagespa
dc.publisherUniversidad de Santander
dc.publisherBucaramanga
dc.publisherFacultad de Ciencias Exactas, Naturales y Agropecuarias
dc.publisherBucaramanga, Colombia
dc.publisherMicrobiología Industrial
dc.relationAbraham, E. P. (2015). The Antibiotics. Comprehensive Biochemistry, 11(4), 181–224. https://doi.org/10.1016/B978-1-4831-9711-1.50022-3
dc.relationArco, J. D. E. L. (2014). Farmacia Abierta Antibióticos : situación actual. 28, 29–33.
dc.relationArendrup, M. C., & Patterson, T. F. (2017). Multidrug-resistant candida: Epidemiology, molecular mechanisms, and treatment. Journal of Infectious Diseases, 216(Suppl 3), S445–S451. https://doi.org/10.1093/infdis/jix131
dc.relationBitar, D., Lortholary, O., Strat, Y. Le, Nicolau, J., Coignard, B., Tattevin, P., Che, D., & Dromer, F. (2014). Deaths Attributable to Carbapenem-Resistant Enterobacteriaceae Infections - Volume 20, Number 7—July 2014 - Emerging Infectious Disease journal - CDC. 20(7), 1149–1155. http://wwwnc.cdc.gov/eid/article/20/7/12-1004_article
dc.relationBrudzynski, K., & Sjaarda, C. (2015). Honey glycoproteins containing antimicrobial peptides, jelleins of the Major Royal Jelly Protein 1, are responsible for the cell wall lytic and bactericidal activities of honey. PLoS ONE, 10(4), 1–21. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0120238
dc.relationChacón, S. (2020). Efecto antibacteriano in vitro del aceite esencial de Cannabis sativa sobre Staphylococcus aureus ATCC 25923 comparado con Gentamicina. 1–42. https://repositorio.ucv.edu.pe/bitstream/handle/20.500.12692/45590/Chacón_SSM-SD.pdf?sequence=8&isAllowed=y
dc.relationChan, D. I., Prenner, E. J., & Vogel, H. J. (2006). Tryptophan- and arginine-rich antimicrobial peptides: Structures and mechanisms of action. Biochimica et Biophysica Acta - Biomembranes, 1758(9), 1184–1202. https://doi.org/10.1016/j.bbamem.2006.04.006
dc.relationClinical and Laboratory Standards Institute. (2018). M07 Methods for Dilution Antimicrobial Susceptibility Tests for Bacteria That Grow Aerobically.
dc.relationCLSI. (2011). Effect of xylitol, sodium fluoride and triclosan containing mouth rinse on Streptococcus mutans. Contemporary Clinical Dentistry, 2(4), 287. https://doi.org/10.4103/0976-237x.91790
dc.relationColín-castro, C., Chávez-heres, T., Magaña, J. J., & Franco-cendejas, R. (2017). Microorganismos bacterianos asociados a infección del torrente sanguíneo en pacientes con quemaduras de un centro de referencia de la Ciudad de México. Investigación En Discapacidad, 6(2), 50–56.
dc.relationCosta-de-oliveira, S., & Rodrigues, A. G. (2020). Candida albicans antifungal resistance and tolerance in bloodstream infections: The triad yeast-host-antifungal. Microorganisms, 8(2). https://doi.org/10.3390/microorganisms8020154
dc.relationDe la Calle, N., Santa, C., & Cardona, N. (2012). Factores de virulencia en hongos. CES Medicina, 26(1), 43–55. http://www.scielo.org.co/pdf/cesm/v26n1/v26n1a05.pdf
dc.relationFlórez-Castillo, J. M., Perullini, M., Jobbágy, M., & De Jesús Cano Calle, H. (2014). Enhancing antibacterial activity against Escherichia coli K-12 of peptide Ib-AMP4 with synthetic analogues. International Journal of Peptide Research and Therapeutics, 20(3), 365–369. https://doi.org/10.1007/s10989-014-9391-2
dc.relationGarcía, M. G., San, I. J., Galán, J., Fidel, I. I., & Morales, E. (2017). Péptidos antimicrobianos :potencialidades terapéuticas Antimicrobial peptides: their therapeutic potential. Revista Cubana de Medicina Tropical, 69(2), 1–13.
dc.relationGarín Fernández Nagore, Delmiro Magdalena Aitor, Garcia Martínez Jesús, & Jaqueti Aroca Jerónimo. (2012). Curso De Formación Continuada a Estudio De Sensibilidad a Los Agentes Antimicrobianos. Asociación Española de Biopatología Médica (AEBM), N°5(Sensibilidad a los Agentes Antimicrobianos.), 730–734.
dc.relationGiacopello, C., Foti, M., Passantino, A., Fisichella, V., Aleo, A., & Mammina, C. (2012). Serotypes and antibiotic susceptibility patterns of Salmonella spp. Isolates from spur-thighed tortoise, Testudo graeca illegally introduced in Italy. Human and Veterinary Medicine, 4(2), 76–81.
dc.relationGreen, B. N., Johnson, C. D., Egan, J. T., Rosenthal, M., Griffith, E. A., & Evans, M. W. (2012). Methicillin-resistant Staphylococcus aureus: An overview for manual therapists. Journal of Chiropractic Medicine, 11(1), 64–76. https://doi.org/10.1016/j.jcm.2011.12.001
dc.relationGross, M. (2013). Antibiotics in crisis. Current Biology, 23(24), R1063–R1065. https://doi.org/10.1016/j.cub.2013.11.057
dc.relationGurung, R. R., Maharjan, P., & Chhetri, G. G. (2020). Antibiotic resistance pattern of Staphylococcus aureus with reference to MRSA isolates from pediatric patients. Future Science OA, 6, FSO464. https://www.future-science.com/doi/10.2144/fsoa-2019-0122
dc.relationGutiérrez, G., & Cardoso, P. (2006). Ácido lipoteicoico: Receptores y mecanismo de transducción. Revista de Educación Bioquímica, 25(2), 41–49.
dc.relationKluytmans, J., van Belkum, A., & Verbrugh, H. (1997). Nasal carriage of Staphylococcus aureus: epidemiology, underlying mechanisms, and associated risks. Clinical Microbiology Reviews, 10(3), 505–520. https://doi.org/10.1128/cmr.10.3.505
dc.relationLee, D. G., Shin, S. Y., Kim, D., Seo, M. Y., Kang, J. H., Kim, K. L., & Hahm, K. (1999). Antifungal mechanism of a cysteine-rich antimicrobial peptide , Ib-AMP1 , from Impatiens balsamina against Candida albicans. 1047–1050.
dc.relationLi, J., Koh, J. J., Liu, S., Lakshminarayanan, R., Verma, C. S., & Beuerman, R. W. (2017). Membrane active antimicrobial peptides: Translating mechanistic insights to design. Frontiers in Neuroscience, 11(FEB), 1–18. https://doi.org/10.3389/fnins.2017.00073
dc.relationMartinez-Ceron , Maria Camila; Romero, Stella Maris; Cascone, Oswaldo, Camperi, S. (2018). Péptidos Antimicrobianos De Plantas. Revista Farmaceutica, 160(ISSN 0034-9496), 19. http://www.anfyb.com.ar/info/revistas/2018/3-GIUDICESSI.pdf
dc.relationMensa, J., Barberán, J., Llinares, P., Picazo, J. J., Bouza, E., Lerma, F. Á., Borges, M., Serrano, R., León, C., Guirao, X., Arias, J., Carreras, E., Sanz, M. A., & Rodríguez, J. A. G. (2008). Guía de tratamiento de la infección producida por Staphylococcus aureus resistente a meticilina. Revista Espanola de Quimioterapia, 21(4), 234–258.
dc.relationMoreno M, C., González E, R., & Beltrán, C. (2009). Mecanismos de resistencia antimicrobiana en patógenos respiratorios. Revista de Otorrinolaringología y Cirugía de Cabeza y Cuello, 69(2), 185–192. https://doi.org/10.4067/s0718-48162009000200014
dc.relationOlascoaga-Del Angel, K. S., Sánchez-Evangelista, G., Carmona-Navarrete, I., Galicia-Sánchez, M. del C., Gómez-Luna, A., Islas-Arrollo, S. J., & Castañeda-Sánchez, J. I. (2018). Péptidos antimicrobianos, una alternativa prometedora para el tratamiento de enfermedades infecciosas. Gaceta Medica de Mexico, 154(6), 681–688. https://doi.org/10.24875/GMM.18003445
dc.relationPadilla, J. C., Lizarazo, F. E., Murillo, O. L., Mendigaña, F. A., Pachón, E., & Vera, M. J. (2017). Transmission scenarios of major vector-borne diseases in Colombia, 1990-2016. Biomedica : Revista Del Instituto Nacional de Salud, 37(0), 27–40.
dc.relationParedes, C. V. T. (2009). Actualización en pruebas de susceptibilidad antifúngica. 26(2), 144–150.
dc.relationPerez, Luis;Zurita, Ingrid;Perez, Ninoska; Patiño, Noelia;Rafael, O. (2010). Revisión Infecciones Intrahospitalarias: Agentes, Manejo Actual y Prevención. Rev Ciennt Med, 13(2), 94–98.
dc.relationPrada-Prada, S., Flórez-Castillo, J., Farfán-García, A., Guzmán, F., & Hernández-Peñaranda, I. (2020). Antimicrobial activity of Ib-M peptides against Escherichia coli O157: H7. PLoS ONE, 15(2), 15–20. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0229019
dc.relationRaheem, N., & Straus, S. K. (2019). Mechanisms of Action for Antimicrobial Peptides With Antibacterial and Antibiofilm Functions. Frontiers in Microbiology, 10(December), 1–14. https://doi.org/10.3389/fmicb.2019.02866
dc.relationRivas-Santiago, B., Sada, E., Hernández-Pando, R., & Tsutsumi, V. (2006). Péptidos antimicrobianos en la inmunidad innata de enfermedades infecciosas. Salud Publica de Mexico, 48(1), 62–71. https://doi.org/10.1590/s0036-36342006000100010
dc.relationRossolini, G. M., Arena, F., Pecile, P., & Pollini, S. (2014). Update on the antibiotic resistance crisis. Current Opinion in Pharmacology, 18, 56–60. https://doi.org/10.1016/j.coph.2014.09.006
dc.relationSaenz P, L. H., & Tejada V, A. C. (2021). Efecto antifúngico in vitro de extracto etanólico del rizoma de Curcuma longa L. Sobre cepas de Candida albicans ATCC 10231. Universidad Privada Antenor Orrego Trujillo 2019. 6(3), 2–3. https://repositorio.upao.edu.pe/bitstream/20.500.12759/8000/1/REP_LESLIE.SAENZ_ANA.TEJADA_EFECTO.ANTIFÚNGICO.IN.VITRO.pdf
dc.relationSchrödinger, L., DeLano, W. (2020). No Title. PyMOL, http://www.pymol.org/pymol.
dc.relationSczostak, A. (2009). Cotton linters: An alternative cellulosic raw material. Macromolecular Symposia, 280(1), 45–53. https://doi.org/10.1002/masy.200950606
dc.relationSilhavy, T. J., Kahne, D., & Walker, S. (2010). The Bacterial Cell Envelope1 T. J. Silhavy, D. Kahne and S. Walker, . Cold Spring Harb Perspect Biol, 2, 1–16. https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2857177/pdf/cshperspect-PRK-a000414.pdf
dc.relationSilhavy, T. J., Ruiz, N., & Kahne, D. (2006). Advances in understanding bacterial outer-membrane biogenesis. Nature Reviews Microbiology, 4(1), 57–66. https://doi.org/10.1038/nrmicro1322
dc.relationTailor, R. H., Acland, D. P., Attenborough, S., Cammue, B. P. A., Evans, I. J., Osborn, R. W., Ray, J. A., Rees, S. B., & Broekaert, W. F. (1997). A novel family of small cysteine-rich antimicrobial peptides from seed of Impatiens balsamina is derived from a single precursor protein. Journal of Biological Chemistry, 272(39), 24480–24487. https://doi.org/10.1074/jbc.272.39.24480
dc.relationTéllez, G. A., & Castaño, J. C. (2010). Péptidos antimicrobianos Antimicrobial peptides. Iunics, 14(1), 55–67. www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed
dc.relationVillalva Álava, V. V., Mecías Tenorio, G. E., Moya Villota, S. R., & Vaca Morla, F. A. (2020). Infecciones micóticas en UCI. Reciamuc, 4(3), 99–108. https://doi.org/10.26820/reciamuc/4.(3).julio.2020.99-108
dc.relationWang, Y., Zhao, Y., Bollas, A., Wang, Y., & Au, K. F. (2021). Nanopore sequencing technology, bioinformatics and applications. Nature Biotechnology, 39(11), 1348–1365. https://doi.org/10.1038/s41587-021-01108-x
dc.relationWhite, T. C., Holleman, S., Dy, F., Mirels, L. F., & Stevens, D. A. (2002). Resistance mechanisms in clinical isolates of Candida albicans. Antimicrobial Agents and Chemotherapy, 46(6), 1704–1713. https://doi.org/10.1128/AAC.46.6.1704-1713.2002
dc.relationZhang, L., & Gallo, R. L. (2016). peptides. CURBIO, 26(1), R14–R19. https://doi.org/10.1016/j.cub.2015.11.017
dc.rightsinfo:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rightshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2
dc.rightsAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)
dc.rightshttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/
dc.rightsDerechos Reservados - Universidad de Santander, 2022. Al consultar y hacer uso de este recurso, está aceptando las condiciones de uso establecidas por los autores.
dc.titleDeterminación de la Actividad Antimicrobiana de los Péptidos Ib-M Frente a Staphylococcus aureus ATCC 25923 y Candida albicans ATCC 10231
dc.typeTrabajo de grado - Pregrado


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