dc.contributorNEVES, Rejane Pereira
dc.contributorLIMA NETO, Reginaldo Gonçalves de
dc.contributorhttp://lattes.cnpq.br/0141395162041630
dc.contributorhttp://lattes.cnpq.br/0360951033804105
dc.creatorBUONAFINA, Maria Daniela Silva
dc.date2019-09-06T19:12:59Z
dc.date2019-09-06T19:12:59Z
dc.date2018-03-08
dc.date.accessioned2022-10-06T16:30:14Z
dc.date.available2022-10-06T16:30:14Z
dc.identifierhttps://repositorio.ufpe.br/handle/123456789/32356
dc.identifier.urihttp://repositorioslatinoamericanos.uchile.cl/handle/2250/3983335
dc.descriptionA otomicose é infecção fúngica oportunista do conduto auditivo externo cujos principais agentes etiológicos são espécies de Aspergillus e Candida. Essa micose é caracterizada por prurido, otorreia e otalgia, e um importante fator de virulência de alguns desses patógenos é a capacidade de formar biofilmes. Tais estruturas aderemse a superfícies as quais podem ocasionar maior dano ao paciente devido a recorrências mais frequentes dessa micose além de resistência a tratamento com antifúngicos. Desta forma, esta pesquisa objetivou detectar, isolar e identificar fungos em amostras clínicas de pacientes com otite fúngica que fazem ou não uso de aparelho auditivo, e buscar novas estratégias para a prevenção, controle e tratamento da otomicose. Fungos foram isolados do conduto auditivo de pacientes com otomicose e identificados por meio da taxonomia clássica e molecular. Foram sequenciadas as regiões ITS e o domínio D1/D2 da região LSU, e os genes da calmodulina e β-tubulina, e no caso de otomicose bilaterial foi analisada a região GTG5 dos isolados. Após crescimento em meio de cultura, uma suspensão foi ajustada para uma concentração desejada de células. Produziram-se biofilmes em placas de microdiluição, nas quais células foram incubadas nos tempos de 24, 48 e 72h e o biofilme quantificado através da solução cristal violeta e de MTT. A atividade antifúngica in vitro das célulasplanctônicas, do biofilme e da determinação do sinergismo, foram avaliados pelo método de microdiluição em caldo, de acordo com o Clinical and Laboratory Standards Institute utilizando o anfotericina B, fluconazol, cetoconazol, ciclopirox olamina, octopirox olamina, derivados tiossemicarbazônicos e D-limoneno. A otomicose foi diagnosticada em 15 pacientes, com idade média de 28 anos; 60% era do sexo masculino. O fator de risco prevalente foi a presença da perfuração timpânica com inflamação exsudativa. Foram isolados e identificados 19 espécimes entre Aspergillus awamori, A. flavus, A. fumigatus, A. niger, A. parasiticus, A. pseudonomius, A. sydowii, A. tamarii, Candida parapsilosis, Millerozyma farinosa e Talaromyces funiculosus. Todos isolados formaram biofilme e tiveram maior atividade metabólica após 24h. As concentrações inibitórias mínimas obtidas de anfotericina B foram 0,125 a 4μg/mL; fluconazol, 16 a 64μg/mL, cetoconazol, 0,03 a 8μg/mL; itraconazol, 0,03 a 0,5μg/mL; ciclopirox olamina, 0,5 a 16μg/mL, e octopirox olamina, 0,5 a 4μg/mL. Derivados de tiossemicarbazonas, L3, L8 e L9, e o limoneno também tiveram atividade contra os isolados. L3, variou de 4 a 1024μg/mL; L8, 2 a 256 μg/mL; L9, 2 a 512 μg/mL, e o limoneno, 32 a 1024μg/mL. Além disso, constatamos sinergismo entre octopirox olamina e o limoneno. Também se verificou a atividade antifúngica no tratameto dos biofilmes de 18 isolados em pelo menos um dos tratamentos. Espécies de Aspergillus continuam sendo os agentes etiológicos mais frenquentes em casos de otomicoses. É cada vez mais claro que uma grande maioria destes fungos tem a capacidade de formar biofilmes e devido a este fato, são refratários ao tratamento desta micose, o que representa um grande problema para os pacientes, uma vez que a dose necessária para erradicar os agentes etiológicos, pode exceder o máximo atingível terapeuticamente as concentrações de antifúngicos.
dc.descriptionCNPq
dc.descriptionOtomycosis is an opportunistic fungal infection of the auditory input conduit in the municipality of Aspergillus and Candida. This mycosis is characterized by pruritus, otorrhea and otalgia, and an important virulence factor of some of these pathogens is the ability to form biofilms. Such structures adhere to surfaces which may cause greater damage to the patient due to more frequent recurrences of this mycosis besides resistance to treatment with antifungals. In this way, this research aimed to detect, isolate and identify fungi in clinical samples of patients with fungal otitis who do or do not use hearing aids, and to seek new strategies for the prevention, control and treatment of otomycosis. Fungi were isolated from the auditory canal of patients with otomycosis and identified through classical and molecular taxonomy. The ITS regions and the D1/D2 domain of the LSU region, and the calmodulin and β-tubulin genes were sequenced, and in the case of bilaterial otomycosis, the GTG5 region of the isolates was analyzed. After growth in culture medium, a suspension was adjusted to a desired concentration of cells. Biofilms were produced in microdilution plates, in which cells were incubated at 24, 48 and 72h times and the biofilm quantified through the crystal violet solution and MTT. The in vitro antifungal activity of planktonic cells, biofilm and synergism was evaluated by the broth microdilution method, according to the Clinical and Laboratory Standards Institute using amphotericin B, fluconazole, ketoconazole, cyclopirox olamine, octopirox olamine, thiosemicarbazonic derivatives and Dlimonene. Otomycosis was diagnosed in 15 patients, with a mean age of 28 years; 60% were male. The prevalent risk factor was the presence of tympanic perforation with exudative inflammation. Twenty nine specimens were identified and identified as Aspergillus awamori, A. flavus, A. fumigatus, A. niger, A. parasiticus, A. pseudonomius, A. sydowii, A. tamarii, Candida parapsilosis, Millerozyma farinosa and Talaromyces funiculosus. All the isolates formed biofilm in the three times and had greater metabolic activity after 24h. The minimum inhibitory concentrations obtained from amphotericin B were 0,125 to 4μg/mL; fluconazole, 16 to 64μg/mL, ketoconazole, 0,03 to 8μg/mL; itraconazole, 0,03 to 0,5μg/mL; cyclopirox olamine, 0,5 to 16 μg/mL, and octopirox olamine, 0,5 to 4 μg/mL. The thiosemicarbazones, L3, L8 and L9 derivatives, and limonene also had activity against the isolates. L3, ranged from 4 to 1024μg/mL; L8, 2 to 256μg/mL; L9, 2 to 512μg/mL, and limonene, 32 to 1024μg/mL. In addition, we found synergism between octopirox olamine and limonene. Antifungal activity was also observed in the treatment of biofilms of 18 isolates in at least one of the treatments. Aspergillus species continue to be the most frequent etiological agents in cases of otomycosis. It is increasingly clear that a large majority of these fungi have the ability to form biofilms and because of this, they are refractory to the treatment of this fungus, which is a major problem for patients, since the dose required to eradicate the fungi etiological, may exceed the maximum therapeutically achievable antifungal concentrations.
dc.formatapplication/pdf
dc.languagepor
dc.publisherUniversidade Federal de Pernambuco
dc.publisherUFPE
dc.publisherBrasil
dc.publisherPrograma de Pos Graduacao em Biologia de Fungos
dc.rightsembargoedAccess
dc.rightsAttribution-NonCommercial-NoDerivs 3.0 Brazil
dc.rightshttp://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/3.0/br/
dc.subjectMicologia médica
dc.subjectMicose
dc.subjectDiagnostico micológico
dc.titleOtomicose : diagnóstico e novas estratégias para o controle, prevenção e tratamento
dc.typedoctoralThesis


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