dc.creatorArbaiza-Barnechea, Martin Daniel
dc.creatorCabrera-Villanueva, Prospero Celestino
dc.date.accessioned2020-11-11 00:00:00
dc.date.accessioned2022-07-01T17:16:17Z
dc.date.accessioned2022-09-29T12:22:09Z
dc.date.available2020-11-11 00:00:00
dc.date.available2022-07-01T17:16:17Z
dc.date.available2022-09-29T12:22:09Z
dc.date.created2020-11-11 00:00:00
dc.date.created2022-07-01T17:16:17Z
dc.date.issued2020-11-11
dc.identifierhttps://repositorio.unisucre.edu.co/handle/001/1631
dc.identifier10.24188/recia.v13.n1.2021.787
dc.identifier2027-4297
dc.identifierhttps://doi.org/10.24188/recia.v13.n1.2021.787
dc.identifier.urihttp://repositorioslatinoamericanos.uchile.cl/handle/2250/3749995
dc.languagespa
dc.publisherUniversidad de Sucre
dc.relationFatehi AN, Bevers MM, Schoevers E, Roelen BA, Colenbrander B, Gadella BM. DNA damage in bovine sperm does not block fertilization and early embryonic development but induces apoptosis after the first cleavages. J Androl. 2006; 27(2):176-188. https://doi.org/10.2164/jandrol.04152
dc.relationGadea J, Sellés E, Marco MA. The predictive value of porcine seminal parameters on fertility outcome under commercial conditions. Reprod Domest Anim. 2004; 39(5):303-308. https://doi.org/10.1111/j.1439-0531.2004.00513.x
dc.relationDavis RO, Drobnis EZ, Overstreet JW. Application of multivariate cluster, discriminate function, and stepwise regression analyses to variable selection and predictive modeling of sperm cryosurvival. Fertil Steril. 1995; 63(5):1051-1057. https://doi.org/10.1016/S0015-0282(16)57547-5
dc.relationTuli R, Schmidt-Baulain R, Holtz W. Computer-assisted motility assessment of spermatozoa from fresh and frozen—thawed semen of the bull, boar and goat Theriogenology. 1992; 38(3):487-490. https://doi.org/10.1016/0093-691X(92)90068-3
dc.relationKarabinus DS, Evenson DP, Jost L, Baer R, Kaproth M. Comparison of semen quality in young and mature Holstein bulls measured by light microscopy and flow cytometry. J. Dairy Sci. 1990; 73(9):2364-2371. https://doi.org/10.3168/jds.S0022-0302(90)78919-9
dc.relationEnciso M. La fragmentación del AND en espermatozoides de mamíferos. (Tesis doctoral) Universidad Autónoma de Madrid: España; 2009 http://hdl.handle.net/10486/4150
dc.relationNtemka A, Tsousis G, Brozos C, Boscos CM, Tsakmakidis IA. Breed differences of bull frozen‐thawed semen. Reprod Domest Anim. 2016; 51: 945-952. https://doi.org/10.1111/rda.12769
dc.relationAmann RP, Katz DF. Andrology Lab Corner: Reflections on C.A.S.A after 25 years. J Androl. 2004; 25:317-325. https://doi.org/10.1002/j.1939-4640.2004.tb02793.x
dc.relationKhalil WA, El-Harairy MA, Zeidan AEB, Hassan MAE, Mohey-Elsaeed O. Evaluation of bull spermatozoa during and after cryopreservation: Structural and ultrastructural insights. International Journal of Veterinary Science and Medicine. 2018; 6:S49-S56. https://doi.org/10.1016/j.ijvsm.2017.11.001
dc.relationAddad R, Freneau G, Resende L, Silva L. Evaluación clínica andrológica de toros nelore y tests de viavilidad espermática, integridad de acrosoma y fragmentación de cromatina a lo largo de tres estaciones de monta. Ciência Animal Brasileira. 2009; 10:1044-1054. https://www.revistas.ufg.br/vet/article/view/3395
dc.relationPosado R, Hernández M, García JJ, Bartolomé DJ, López C, Gosálvez J. Evolución de la fragmentación del ADN en semen criopreservado de toros de Lidia. Arch Cootec. 2011; 60(231):441-444. http://doi.org/10.4321/S0004-05922011000300031
dc.relationDuran EH, Morshedi M, Taylor S, Oehninger S. Sperm DNA quality predicts intrauterine insemination outcome: a prospective cohort study. Human Reproduction. 2002; 17(12):3122-3128. https://doi.org/10.1093/humrep/17.12.3122
dc.relationEvenson DP, Darzynkiewicz Z, Melamed MR. Relation of mammalian sperm chromatin heterogeneity to fertility. Science. 1980; 210(4474):1131-1133. https://doi.org/10.1126/science.7444440
dc.relationLarson KL, DeJonge CJ, Barnes AM, Jost LK, Evenson DP. Sperm chromatin structure assay parameters as predictors of failed pregnancy following assisted reproductive techniques. Hum Reprod. 2000; 15(8):1717-1722. https://doi.org/10.1093/humrep/15.8.1717
dc.relationJohnson LA, Weitze KF, Fiser P, Maxwell WM. Storage of boar semen. Anim Reprod Sci. 2000; 62(1-3):143-172. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00157-3
dc.relationViñán DH, Alvarado ME. Adición de metil- β-ciclodextrina cargada de colesterol sobre la criopreservación de semen de toros Holstein Friesian. Revista De Investigaciones Veterinarias Del Perú. 2020; 30(4):1611-1618. https://doi.org/10.15381/rivep.v30i4.17159
dc.relationJanuskauska A, Johannisson A, Rodriguez-Martinez H. Assessment of sperm quality through fluorometry and sperm chromatin structure assay in relation to field fertility of frozen-thawed semen from Swedish AI bulls. Theriogenology. 2001; 55(4):947-961. https://doi.org/10.1016/S0093-691X(01)00456-3
dc.relationVeloz DM. Evaluación de la calidad espermática de reproductores bovinos mediante el uso de sistemas de evaluación seminal convencional y sistema C.A.S.A (análisis seminal asistido por computadora) y su respuesta con la fertilidad por inseminación artificial. Tesis (Maestría). Universidad de Cuenca: Ecuador; 2017. http://dspace.ucuenca.edu.ec/handle/123456789/28466
dc.relationSundararaman M, Kalatharan J, Thilak J. Computer assisted semen analysis for quantification of motion characteristics of bull sperm during cryopreservation cycle. Vet World. 2012; 5(12):723-726. https://doi.org/10.5455/vetworld.2012.723-726
dc.relationMorte MI, Rodrigues AM, Soares D, Rodrigues AS, Gamboa S, Ramalho-Santos J. The quantification of lipid and protein oxidation in stallion spermatozoa and seminal plasma: seasonal distinctions and correlations with DNA strand breaks, classical seminal parameters and stallion fertility. Anim Reprod Sci. 2008; 106(1-2):36-47. https://doi.org/10.1016/j.anireprosci.2007.03.020
dc.relationMuiño OR. Evaluación de la motilidad y viabilidad del semen bovino mediante el uso de sistemas C.A.S.A y citometría de flujo, identificación de subpoblaciones espermáticas. Tesis (Grado). Universidad de Santiago de Compostela: España; 2008. http://hdl.handle.net/10347/2406
dc.relationHirano Y, Shibahara H, Obara H, Suzuki T, Takamizawa S, Yamaguchi C, Tsunoda H, Sato I. Relationships between sperm motility characteristics assessed by the computer-aided sperm analysis (C.A.S.A) and fertilization rates in vitro. J Assist Reprod Genet. 2001; 18(4):213-218. https://doi.org/10.1023/A:1009420432234
dc.relationOrmachea VE, Calsin CB, Zegarra OE. Cinética y morfometría espermática en semen congelado sexado y convencional de toros Brown Swiss. Revista De Investigaciones Veterinarias Del Perú. 2019; 30(1):500-506. https://doi.org/10.15381/rivep.v30i1.14696
dc.relationAncco G. Efecto de la motilidad espermática en la producción de embriones in vitro en bovinos. Tesis (Grado). Universidad Nacional Agraria la Molina: Ecuador; 2017. http://repositorio.lamolina.edu.pe/handle/UNALM/2898
dc.relationMora C, Mendez N. Evaluación espermática de ganado bovino mediante un sistema de análisis computacional (C.A.S.A.). Tlamati Sabiduría. 2016; 7:1-10. http://tlamati.uagro.mx/t7e2/241.pdf
dc.relationQuintín FJ, Hernández M, Sevilla M, Banzo P, Alabart JL, Serraller JM. Valoración reproductiva de toros jóvenes de testaje de raza Parda de montaña. AIDA. 2013. http://hdl.handle.net/10532/2275
dc.relationShanis BS, Check IJ, Bolendorf A, Interpretation and misinterpretation of semen parameters. Archives of Andrology Journal of Reproductive Systems. 2009; 23(3):213-227. https://doi.org/10.3109/01485018908986844
dc.relationBravo JA, Montanero J, Calero R, Roy TJ. Relación entre variables subjetivas e informatizadas del movimiento espermático del morueco. Archivos de Zootecnia. 2011; 60(232):1087-1094. http://doi.org/10.4321/S0004-05922011000400024
dc.relationHolt WV. Basic aspects of frozen storage of semen. Anim Reprod Sci. 2000; 62(1-3):3-22. https://doi.org/10.1016/S0378-4320(00)00152-4
dc.relationWatson PF. Recent developments and concepts in the cryopreservation of spermatozoa and the assessment of their post-thawing function. Reprod Fertil Dev. 1995; 7(4):871-891. https://doi.org/10.1071/rd9950871
dc.relationhttps://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/download/e787/952
dc.relationNúm. 1 , Año 2021 : RECIA 13(1):ENERO-JUNIO 2021
dc.relatione787
dc.relation1
dc.relatione787
dc.relation13
dc.relationRevista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA
dc.rightshttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/
dc.rightsinfo:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rightshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2
dc.rightsRevista Colombiana de Ciencia Animal - RECIA - 2021
dc.sourcehttps://revistas.unisucre.edu.co/index.php/recia/article/view/e787
dc.subjectCryopreservation
dc.subjectDNA fragmentation
dc.subjectviability
dc.subjectmotility
dc.subjectsperm kinetics
dc.subjectCriopreservación
dc.subjectfragmentación del ADN
dc.subjectviabilidad
dc.subjectmotilidad
dc.subjectcinética espermática
dc.titleEfecto de la criopreservación espermática en la fragmentación del ADN, viabilidad, y parámetros cinéticos en toros Brown Swiss
dc.typeArtículo de revista
dc.typeJournal article


Este ítem pertenece a la siguiente institución