dc.contributorVillarreal Camacho, José Luis
dc.creatorCaldera García, Sandy Milena
dc.date.accessioned2022-03-16T21:10:15Z
dc.date.available2022-03-16T21:10:15Z
dc.date.created2022-03-16T21:10:15Z
dc.identifierhttps://hdl.handle.net/10901/21913
dc.description.abstractIntroducción. El dengue constituye uno de los problemas prioritarios en la salud pública, es transmitida por el insecto Aedes (Stegomyia) aegypti (Linnaeus, 1762). Actualmente una de las herramientas más importantes para el control del dengue es la implementación de estrategias de lucha contra el vector, sin embargo, poco es lo que se conoce sobre la variabilidad genética de las poblaciones de este insecto en el país y su adaptación a los ambientes urbanos sobre los cuales se ejercen constantes presiones selectivas, como el uso de insecticidas; por esta razón se quiso conocer el estado actual de los estudios de la caracterización genética de las poblaciones de Aedes aegypti estudiadas en Colombia utilizando el gen mitocondrial ND4. Métodos. Se realizó una búsqueda bibliográfica sistemática con el uso de palabras clave en las bases de datos Medline, Pubmed, Science Direct y Springerlink. Los artículos estaban escritos en inglés o español y publicados a partir del año 1967 por considerarse publicaciones históricas con la finalidad de tener una revisión amplia y profunda sobre el tema. Resultados y discusión. Los trabajos realizados en Colombia proporcionan una valiosa información para el conocimiento de la genética de las poblaciones Aedes aegypti en el país, encontrando una relación directa con los realizados en Brasil, México, Perú y Kenya. Reuniendo así un conjunto de evidencias que demuestran que las poblaciones Aedes aegypti están genéticamente diferenciadas y estructuradas. Conclusiones. Se puede concluir que el gen mitocondrial ND4 empleado como marcador genético en los trabajos referenciados sobre el análisis de la secuencia nucleotídica de este gen ha resultado ser de gran utilidad, ya que tiene la suficiente mutabilidad para la identificación de variantes, hecho que contribuye a comprender la distribución del vector en el país y la filogenética mitocondrial
dc.relationLima, R. S., Jr., & Scarpassa, V. M. Evidence of two lineages of the dengue vector Aedes aegypti in the Brazilian Amazon, based on mitochondrial DNA ND4 gene sequences. Genet Mol Biol. 2009; 32(2): 414-422
dc.relationOlano, Víctor Alberto. Aedes aegypti en el área rural: implicaciones en salud pública. Biomédica [en línea]. 2016; 36(2): 169-173. Disponible en: <http://www.scielo.org.co/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0120- 41572016000200001&lng=en&nrm=iso>. ISSN 0120-4157
dc.relationAriosto Ardila, Escovar Jesús, Bello Felio. Características de nuevos cultivos celulares derivados de tejidos embrionarios de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae): Nuevos cultivos celulares de Aedes aegypti. Biomédica. 2005; 25(1): 65-75
dc.relationSantiago Amariles-Barrera, Carlos M. García-Pajón, Gabriel ParraHenao. Actividad insecticida de extractos vegetales sobre Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) vector del dengue en Colombia. Rev CES Med. 2007; 21(1): 47-54
dc.relationOrganización Mundial de la Salud. Nota descriptiva dengue. Fecha de consulta: 26 febrero de 2017. Disponible en: http://www.who.int/es/newsroom/fact-sheets/detail/dengue-and-severe-dengue
dc.relationZambrano B, San Martin J. L. Epidemiology of Dengue in Latin America J. Ped Infect Dis (2014) 3 (3): 181-182 first published online August 2, 2014)
dc.relationPadilla JC, Rojas DP, Sáenz-Gómez R. Dengue en Colombia: Epidemiología de la reemergencia a la hiperendemia. Universidad del Rosario. Primera Edición. Bogotá D.C. 2012.)
dc.relationInstituto Nacional de Salud. Boletín epidemiológico, semana 52 de 2016: Dengue. Fecha de consulta: 1° de febrero de 2017. Disponible en: http://www.ins.gov.co/boletinepidemiologico/Boletn%20Epidemiolgico/2016%20Bolet%C3%ADn%20e pidemiol%C3%B3gico%20semana%2052%20-.pdf
dc.relationInstituto Nacional de Salud. Dirección de Vigilancia y Análisis del Riesgo en Salud Pública. Boletín epidemiológico semanal - BES. Semana epidemiológica 52 de 2017
dc.relationLovin, D. D., Washington, K. O., deBruyn, B., Hemme, R. R., Mori, A., Epstein, S. R., Severson, D. W. Genome-based polymorphic microsatellite development and validation in the mosquito Aedes aegypti and application to population genetics in Haiti. BMC Genomics. 2009; 10: 590. doi: 10.1186/1471-2164-10-590
dc.relationAvise, J. Phylogeography: The history and formation of species. Harvard University Press London, UK. 2000
dc.relationSan Martin, J. L., Brathwaite, O., Zambrano, B., Solorzano, J. O., Bouckenooghe, A., Dayan, G. H., & Guzman, M. G. The epidemiology of dengue in the americas over the last three decades: a worrisome reality. Am J Trop Med Hyg. 2010; 82(1): 128-135
dc.relationOrganización mundial de la salud (OMS). Dengue y dengue hemorrágico. Nota descriptiva N° 117. Diciembre de 2012. Disponible en: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs117/es/
dc.relationMinisterio de la protección social, subdirección de vigilancia y control en salud pública (SIVIGILA). Situación de las enfermedades transmisibles objeto de vigilancia intensificada en salud pública. Boletín epidemiológico semanal número 1 de 2013
dc.relationBello, S; Díaz, E; Malagón, J; Romero, M & Salazar, V. Medición Del Impacto Económico Del Dengue En Colombia: Una Aproximación A Los Costos Médicos Directos En El Periodo 2000-2010. Biomédica. 2011; 31 (Sup.3): 3-315
dc.relationCáceres, O & León, W. Variantes genéticas de Aedes Aegypti y su asociación con el serotipo del virus dengue en un área endémica del Perú. Serie Informes Técnicos Nº96. Ministerio De Salud Instituto Nacional De Salud Centro De Información y Documentación Científica. 2007
dc.relationCaldera, S. M., Jaramillo, M. C., Cochero, S., Pérez-Doria, A., & Bejarano, E. E. Diferencias genéticas entre poblaciones de Aedes aegypti de municipios del norte de Colombia, con baja y alta incidencia de dengue. Biomédica. 2013; 33 (Supl.1): 89-98
dc.relationOcampo CB, Salazar-Terreros MJ, Mina NJ, McAllister J, Brogdon W. Insecticide resistance status of Aedes aegypti in 10 localities in Colombia. Acta Trop. 2011; 118(1): 37-44
dc.relationPamela Yáñez, Enrique Mamani, Jorge Valle, María Paquita García, Walter León, Pablo Villaseca, Dina Torres, César Cabezas. Variabilidad genética del Aedes aegypti determinada mediante el análisis del gen mitocondrial ND4 en once áreas endémicas para dengue en el Perú. Rev Peru Med Exp Salud Pública. 2013; 30(2): 246-50
dc.relationMarquetti, M. C. & Bisset, L. J. Aspectos bioecologicos de importancia para el control de Aedes aegypti y otros culicidos en el ecosistema urbano. Cuba: Instituto de medicina tropical “PEDRO KOURÍ”, departamento control de vectores. Ministerio de Educación Superior de la República de Cuba. Editorial Universitaria. 2008
dc.relationGratz NG. Emergency control of Aedes aegypti as a diseases vector in urban areas. J.Am. Mosq. Control. Assoc. 1991; 7(3): 353-365
dc.relationGubler DJ, Novak R.J, Vergne E, Colon NA, Velez M, Fowler J. Aedes (G) mediovittatus (Diptera: Culicidae) a potential maintenance vector of dengue viruses in Puerto Rico. J. Med. Entomol. 1985; 22(5): 469-475
dc.relationOrganización Panamericana de la Salud (OPS). Dengue y dengue hemorrágico en las Américas: su prevención y control. Washington. (Publicación Científica Nº 548). 1995
dc.relationConde Osorio, Andrea Marcela. Estudio de la longevidad y el ciclo gonotrófico del Aedes (Stegomyia) aegypti (Linnaeus, 1762), cepa Girardot (Cundinamarca) en condiciones de laboratorio. Pontificia Universidad Javeriana. Bogotá. 2003
dc.relationConsoli R, De Olivera R. Principais mosquitos de importancia sanitaria no Brasil. Rio de Janeiro; FIOCRUZ. 1994; 228
dc.relationRossi, Gustavo C., Almirón, Walter R. Clave ilustrada para la identificación de larvas de mosquitos de interés sanitario encontradas en criaderos artificiales en la Argentina. Serie Enfermedades Transmisibles. Fundación mundo sano. 2004. Disponible en: http://www.mundosano.org/documentos/monografias/Monografia%205.pdf
dc.relationCarrazana Trujillo Midiala, Marquetti Fernández María del Carmen, Vázquez Cáceres Amaury, Montes de Oca Montano José Luis. Dinámica estacional y temporal de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) en el municipio Cienfuegos. Rev Cubana Med Trop. 2010; 62(2): 98-106
dc.relationReineri J, Harboch R, Kitching I. Phylogeny and classification of Aedini (Diptera:Culicidae), based on morphological character of all life stages. Zoological Journal of Linnean Society. 2004; 142(3): 289-368
dc.relationLima Júnior Raimundo Sousa. Estimativas de Variação Genética do Gene ND4 do DNA Mitocondrial em Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) da Amazônia, Brasil. UFAM/INPA. 2007
dc.relationChaverri LG. Clave fotográfica para hembras de zancudos (Diptera: Culicidae) presentes en Centroamérica y Panamá. 2003. Disponible en: http://www.inbio.ac.cr/EN/papers/culicidae_hembra/Clave.pdf
dc.relationCarpenter SJ, LaCasse WJ. Mosquitoes of North America. Berkeley: University of California Press. 1995; 262-265
dc.relationRueda LM. Pictorial keys for the identification of mosquitoes (Diptera: Culicidae) associated with dengue virus transmission. Auckland, New Zealand: Magnolia Press. 2004; 589: 1-60
dc.relationC.D.C. (Center for Disease Control), Bureau of Tropical Diseases. Vector Topics. N° 4. Biología y Control del Aedes aegypti. C.D.C. Atlanta Georgia. 1980; 77
dc.relationMartínez, F.C. Los Mosquitos de México (Diptera: Culicidae) Taxonomía, Distribución Geográfica y su importancia en Salud Pública. Tesis México. D.F.: UNAM. Facultad de Ciencias. 1987; 198
dc.relationAtur Mirsa. Datos experimentales sobre aspectos bioecológicos del Aedes aegypti (Linn), desarrollados en el laboratorio. Revista de Sanidad y Asistencia Social. Instituto Nacional de Higiene. Venezuela. 1956; 341
dc.relationMilton E. Tinker, Victor Alberto Olano. Ecología del Aedes aegypti en un pueblo de Colombia, Sur América. Biomédica. 1993; 13(1): 5-14
dc.relationMilton E. Tinker, Victor Alberto Olano. Ecología del Aedes aegypti en un pueblo de Colombia, Sur América. Biomédica. 1993; 13(1): 5-14
dc.relationJaime Thirión-Icaza. El mosquito Aedes aegypti y el dengue en México. Bayer Environmental Science. 2003; 1-151
dc.relationSchoof, H.F. Mating, Resting Habits and Dispersal of Aedes aegypti. Bull. Wld. Hlth. Org. 1967; 36(4): 600-601
dc.relationMichael J. Nelson. Aedes aegypti: Biología y Ecología. Organización Panamericana de la Salud. Washington, DC. 1986; 1-50
dc.relationMontero Guillermo. Biología de Aedes aegypti. (Recopilación). 2009. Disponible en: www.produccion-animal.com.ar
dc.relationRepública de Colombia. Ministerio de salud, dirección general de promoción y prevención. Salud Colombia 2000. Guía de atención del dengue. 2000; Disponible en: http://www.saludcolombia.com/actual/htmlnormas/ntdengue.htm
dc.relationGast Galvis Augusto. Historia de la Fiebre amarilla en Colombia. Ministerio de Salud, Instituto Nacional de Salud. Santafé de Bogotá. 1982; 95
dc.relationPadilla Julio Cesar, Rojas Diana y Saenz Roberto. Dengue en Colombia, Epidemiologia de la reemergencia a la hiperendemia. Bogotá D.C. 2012; 284 p
dc.relationGroot, H. The Reinvasion of Colombia by Aedes aegypti: Aspects to Remember. Am. J. Trop. Med. Hyg. 1980; 29(3): 330-338
dc.relationMario Hernández Álvarez, Diana Obregón Torres, Néstor Miranda Canal, Claudia Mónica García, Juan Carlos Eslava, Román Vega Romero. La Organización Panamericana de la Salud y el Estado colombiano: Cien años de historia 1902-2002. OPS. Bogotá. 2002
dc.relationMinisterio De Salud, República De Colombia, Sistema Nacional De Vigilancia En Salud Pública (Sivigila). Fiebre Amarilla En Colombia. Semana Epidemiológica # 27. 2001
dc.relationMorales, A., Olano, V. A. & Ferro, C. Laboratorio de Entomología, 1934 – 1997. En: 80 Años del INS. Una Historia, Un Compromiso. INS. Bogotá. 1998; 414 p
dc.relationMinisterio de la Protección Social República de Colombia. Guía de Atención Clínica del Dengue. 2009
dc.relationMinisterio de la Protección Social República de Colombia. Oficina Asesora de Comunicaciones. Avanzan acciones nacionales para prevención y control del dengue. Boletín de Prensa No 021. 2010
dc.relationOrganización mundial de la salud, OMS. Dengue y dengue hemorrágico. 2009. Disponible en: http://www.who.int/mediacentre/factsheets/fs117/es/
dc.relationRepública De Colombia, Ministerio De Salud, Sistema Nacional De Vigilancia En Salud Pública (Sivigila). Situación de las enfermedades transmisibles objeto de vigilancia intensificada en salud pública. Semana Epidemiológica # 52. 2002
dc.relationVázquez, A. Ecología y Formación Ambiental. McGraw Hill, México. 1993
dc.relationHartl, D.L., y A.G. Clark. Principles of Population Genetics. Third edition. Sinauer Associates, Massachusetts, EE.UU. 1997
dc.relationSturtevant, A.H.A. History of Genetic. Cold Spring Harba Laboratory Press, California, EE.UU. 2001
dc.relationGriffiths, A.J., W.M. Gelbart, J.H. Miller, y R.C. Lewontin. Modern Genetic Analysis. W. H. Freeman and Company, New York, EE.UU. 1999
dc.relationYan, G.; Chadee, D.D.; Severson, D.W. Evidence for genetic hitchhiking effect associated with insecticide resistance in Aedes aegypti. Genetic Society of America. 1998; 148(2): 793-800
dc.relationMerrill, S.A.; Ramberg, F.B.; Hagedorn, H.H. Philogeography and population structure of Aedes aegypti in Arizona. Am. J. Trop. Med. Hyg. 2005; 72(3): 304-310
dc.relationDos Santos Paduan, Karina. Araújo-Júnior, João P. Ribolla, Paulo E.M. Genetic variability in geographical populations of Aedes aegypti (Diptera, Culicidae) in Brazil elucidated by molecular markers. Brazilian Society of Genetics. Genetics and Molecular Biology. 2006; 29(5): 391- 395
dc.relationDa Costa-da-Silva André Luis, Lara Capurro Margareth, Bracco José Eduardo. Genetic lineages in yellow fever mosquito Aedes (stegomyia) aegypti (Diptera: Culicidae) from Peru. Mem inst Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro. 2005; 100(6): 639-644
dc.relationSergio Russo Matioli, Flora M. C. Fernandes. Biologia molecular e evolução. Ribeirão Preto: Holos Editora. 2001; 202
dc.relationLang, B.F.; Gray, M.W.; Burger, G. Mitochondrial genome evolution and the origin of eukaryotes. Annu. Rev. Genet. 1999; 33: 351-397
dc.relationBoore, J.L. Animal mitochondrial genomes. Nucleic Acids Research. 1999; 27(8): 1767-1780
dc.relationGray, M.W. Origin and evolution of mitochondrial DNA. Ann. Rev. Cell. Biol. 1989; 5: 25-50
dc.relationBeaty, B.J. & Marquardt, W.C. The biology of disease vectors. University press of Colorado. Niwot, USA. 1996; 632p
dc.relationBrown WM, George M Jr and Wilson AC. Rapid evolution of animal mitochondrial DNA. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 1979; 76(4): 1967-1971
dc.relationBracco José Eduardo, Lara Capurro Margareth, Lourenço-deOliveira Ricardo, Mureb Sallum Maria Anice. Genetic variability of Aedes aegypti in the Américas using o mitochondrial gene: evidence of multiple introductions. Mem inst Oswaldo Cruz, Rio de Janeiro. 2007; 102(5): 573-580
dc.relationPanos, L., Koutroumbas G., Kotsyfakis M., Louis C. The mitochondrial genome of the mediterranean fruit fly, Ceratitis capitata. Insect Molecular Biology. 2000; 9(2): 139-144
dc.relationHlaing, Thaung. Tun-Lin, Willoughby. Somboon, Pradya. Socheat, Duong. Setha, To. Min, Sein. Seng Chang, Moh. Walton, Catherine. Mitochondrial pseudogenes in the nuclear genome of Aedes aegypti 74 mosquitoes: implications for past and future population genetic studies. BMC Genetics. 2009; 10:11
dc.relationAltschul S, Gish W, Miller W, Myers E, Lipman D. Blast. Basic local alignment search tool. J Mol Biol. 1990; 215(3): 403-410
dc.relationTajima F. Evolutionary relationship of ADN sequences in finite populations. Genetics. 1983; 105(2): 437-460
dc.relationFu YX, Li WH. Statistical tests of neutrality mutations. Genetics. 1993; 133(3): 693-709
dc.relationRozas J, Sánchez-Del Barrio J, Messeguer X, Rozas R. DnaSP 4.5: DNA polymorphism analyses by the coalescent and other methods. Bioinformatics. 2003; 19 (18): 2496-2497
dc.relationBandelt Hans; Forster, Peter y Rohl, Arne. Median-joining networks for inferring intraspecific phylogenies. En: Mol Biol Evol. 1999; 16(1): 37-48
dc.relationClement M, Posada D, Crandall KA. TCS: A computer program to estimate gene genealogies. Mol Ecol. 2000; 9: 1657-60. http://dx.doi.org/10.1046/j.1365-294x.2000. 01020.x
dc.relationExcoffier, L, and Lischer, H.E.L. Arlequin Suite ver 3.5, a New Series of Programs to Perform Population Genetics Analyses under Linux and Windows. Molecular Ecology Resources. 2010; 10(3): 564-567
dc.relationBosio Christopher F., Harrington Laura C., Jones James W., Sithiprasasna Ratana, Norris Douglas E., And Scott Thomas W. Genetic structure of Aedes aegypti populations in Thailand using 75 Mitochondrial DNA. American Society of Tropical Medicine and Hygiene. 2005; 72(4): 434–442
dc.relationSylla Massamba, Christopher Bosio, Ludmel Urdaneta-Marquez, Mady Ndiaye, William C. Black IV, Gene Flow, Subspecies Composition, and Dengue Virus-2 Susceptibility among Aedes aegypti Collections in Senegal. Harris E, ed. PLoS Neglected Tropical Diseases. 2009; 3(4): e408
dc.relationJaimes-Dueñez J, Arboleda S, Triana-Chávez O, Gómez-Palacio A. Distribución espacio-temporal de Aedes aegypti (Diptera: Culicidae) Linajes mitocondriales en ciudades con distintas tasas de incidencia del dengue sugieren una compleja dinámica de población del dengue Vector en Colombia. PLoS Negl Trop Dis. 2015; 9 (4): e0003553. https://doi.org/10.1371/journal.pntd.0003553
dc.relationDos Santos Paduan Karina, Ribolla Paulo. Mitochondrial DNA polymorphism and heteroplasmy in populations of Aedes aegypti in Brazil. Journal of Medical Entomology. 2008; 45(1): 59–67
dc.relationGorrochotegui-Escalante, Norma; Gómez-Machorro, Consuelo; Lozano-Fuentes, Saúl; Fernandez-Salas, Ildefonso; Muñoz, María De Lourdes; Farfan-Ale, Jose A.; Garcia-Rejon, Julian; Beaty, Barry J.; Black Iv, William C. Breeding structure of Aedes aegypti populations in Mexico varies by region. American Society of Tropical Medicine and Hygiene. 2002; 66(2): 213–222
dc.relationAnaya Chávez Yosed Patricia. Evaluación de la susceptibilidad a insecticidas en Aedes aegypti capturados en el municipio de Sincelejo, departamento de Sucre, Colombia. Trabajo de grado (Biología). Universidad de Sucre. Facultad de educación y ciencia. Programa de biología con énfasis en biotecnología. 2008
dc.relationOcampo, C. & Wesson, D. Population dynamics of Aedes aegypti from a dengue hyperendemic urban setting in Colombia. Am J Trop Med Hyg. 2004; 71 (4): 506-513
dc.relationHartl, D.L., y A.G. Clark. Principles of Population Genetics. Third edition. Sinauer Associates, Massachusetts, EE.UU. 1997
dc.relationBracco, José Eduardo. Genealogia, distribuição e história de haplótipos do gene mitocondrial NADH4 em populações do Aedes (Stegomyia) aegypti (Diptera: Culicidae) no Brasil. Universidade De São Paulo. São Paulo, Brasil. 2004
dc.relationMaría Claudia Atencia, María de Jesús Pérez, María Cristina Jaramillo, Sandy Milena Caldera, Suljey Cochero, Eduar Elías Bejarano. Primer reporte de la mutación F1534C asociada con resistencia cruzada a DDT y piretroides en Aedes aegypti en Colombia. Biomédica. 2016; 36(3): 432-437. Disponible en: https://www.revistabiomedica.org/index.php/biomedica/article/view/2834/3 354
dc.relationMinisterio de la protección social, subdirección de vigilancia y control en salud pública, República de Colombia. Instituto Nacional De Salud. Boletín de Vigilancia Epidemia por Dengue en Colombia. 2010; Boletín 29
dc.relationFrank H. Collins, M. Alina Mendez, Melissa O. Rasmussen, Philip C. Mehaffey, Nora J. Besansky, Victoria Finnerty. A Ribosomal RNA gene probe differentiates member species of the Anopheles gambiae complex. Am. J.Trop. Med. Hyg. 1987; 37(1): 37-41
dc.relationKumar S, Tamura K, Nei M. MEGA 5: Integrated software for molecular evolutionary genetics analysis and sequence alignment. Brief Bioinform. 2004; 5: 150-63. http://dx.doi.org/10.1093/bib/5.2.150
dc.relationKoichiro Tamura, Daniel Peterson, Nicholas Peterson, Glen Stecher, Masatoshi Nei, Sudhir Kumar; MEGA5: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Using Maximum Likelihood, Evolutionary Distance, and Maximum Parsimony Methods. Mol Biol Evol. 2011; 28(10): 2731-2739
dc.relationMasatoshi Nei and Sudhir Kumar. Molecular Evolution and Phylogenetics. Oxford University Press, New York. 2000; 385
dc.relationConn, J; Mitchell, S y Cockburn, A. Mitochondrial DNA variation within and between two species of neotropical anopheline mosquitoes (Dipitera: Culicidae). En: Journal of Heredity. 1997; 88(2): 98-107
dc.relationAna Maria De Merida, Margarita Palmieri, Maria Marta Yurrita, Alvaro Molina, Eduviges Molina, AND William C. Black IV. Mitochondrial DNA variation among Anopheles albimanus localities. Am. J. Trop. Méd. Hyg. 1999; 61(2): 230-239
dc.relationScarpassa, V.M., Geurgas, S., Azeredo-Espin, A.M.L., Tadei, W.P. Genetic divergence in mitochondrial DNA of Anopheles nuneztovari (Diptera: Culicidae) from Brasil and Colômbia. Genetics and Molecular Biology. 2000; 23(1): 71-78
dc.relationMasatoshi Nei. Molecular evolutionary genetics. New York: Columbia University Press. 1987; 512
dc.relationHerrera Flor, Urdaneta Ludmel, Rivero José, Zoghbi Normig, Ruiz Johanny, Carrasquel Gabriela et al. Population genetic structure of the dengue mosquito Aedes aegypti in Venezuela. Mem Inst Oswaldo Cruz. 2006; 101(6): 625-633
dc.relationY X Fu and W H Li. Statistical tests of neutrality of mutations. GENETICS. 1993; 133(3): 693-709
dc.relationKimura, M. The neutral theory of molecular evolution. Cambridge University Press, Cambridge, U.K. 1983
dc.relationReinaldo Brito, Maura Manfrin y Fabio Sene. Mitochondrial DNA phylogeography of Brazilian populations of Drosophila buzzatii. En: Genetics and Molecular Biology. 2002; 25(2): 161 – 171
dc.relationUlises Iturbe. Adaptaciones y adaptación biológica, revisada. Revista de la sociedad española de biología evolutiva. 2010; 5(1): 5- 2
dc.relationWatterson, G. A. On the number of segregating sites in genetical models without recombination. En: Theor. Pop. Biol. April. 1975; 7(2): 256-276
dc.relationBurugu, M.W., Sang, R.C., Kamau, L.W., Kenya, E.U. Genetic structure of Aedes aegypti populations in coastal and inland Kenya using mitochondrial DNA. Centre for Virus Research, Kenya Medical Research Institute. 2008
dc.relationTajima, Fumio. Statistical method for testing the neutral mutation hypothesis by DNA polymorphism. Genetics. 1989; 123(3): 585-595
dc.relationCastillo, Amanda. La selección natural a nivel molecular. Ecología molecular. México. 2007; 12-48
dc.relationWright, Sewall. The genetical structure of populations. Chicago: University of Chicago Press. Annals of Eugenics. 1951; 15: 323-354
dc.relationDaniel Piñero. La variabilidad genética de las especies: aspectos conceptuales y sus aplicaciones y perspectivas en México. Capital Natural de México: conocimiento actual de la biodiversidad. 2008; 415- 435
dc.relationCosta CV, Paduan KS, Ribolla EM, Lourenco-de-Oliveira R. Temporal analysis of mitochondrial gene (NDH4) in Aedes aegypti populations from endemic and non-endemic areas in Brazil. Rio de Janeiro, Brazil. Departamento de Entomologia, FIOCRUZ. 2006
dc.relationHuber K, Le Loan L, Hoang TH, Ravel S, Rodhain F, FaillouxAB. Genetic differentiation of the dengue vector, Aedes aegypti (Ho Chi Minh City, Vietnam) using microsatellite markers. Mol Ecol. 2002; 11(9): 1629– 1635
dc.relationExcoffier L, Smouse PE, Quattro JM. Analysis of molecular variance inferred from metric distances among DNA haplotypes: Application to human mitochondrial DNA restriction data. Genetics. 1992; 131(2): 479- 491
dc.relationPeakall R, Smouse P. GENALEX 6.5: Genetic analysis in Excel, population genetic software for teaching and research. Bioinformatics. 2012; 28(19): 2537-2539
dc.relationMark Berg Jeremy, Stryer Lubert, Tymoczko John. Bioquímica. Versión española por: José M. Macarulla. Barcelona. Editorial Reverte S. A. Sexta edición. 2008
dc.relationPan American Health Organization. Scientists studying intensified vector control measures to combat zika, dengue and chikungunya in the Americas. 2016. Disponible en: http://www2.paho.org/HQ/index. php?option=com_content&view=article&id=11780%3Ascientists-studyingintensified-vector-control-measures-to-combat-zikadengue-chikungunyaamericas&Itemid=1926&lang=en
dc.relationSuárez OM, Bergold GH. Investigations of an outbreak of Venezuelan equine encephalitis virus in towns of eastern Venezuela. Am J Trop Med Hyg. 1968; 17: 875-80
dc.relationCristophers SR. Aedes aegypti (L). The yellow fever mosquito. Cambridge: University Press. 1960
dc.relationSawyers- Kenton Rebeca, Sawyers -Kenton Rosemary y Pinto - Tomas Adrián. Papel de la bacteria endosimbionte Wolbachia en el control de enfermedades vectoriales: dengue, zika y chikunkunya. Acta méd costarric. 2017; 59(4): 130-133
dc.relationHedrick, P. W. Genetics of Populations (Vol. Cuarta edición). Estados Unidos: Jones and Bartlett. 2011
dc.relationMoreno, M., Bickersmith, S., Harlow, W., Hildebrandt, J., McKeon, S. N., Silva-do-Nascimento, T., Conn, J. E. Phylogeography of the neotropical Anopheles triannulatus complex (Diptera: Culicidae) supports deep structure and complex patterns. Parasites & Vectors. 2013; 6-47
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dc.rightsAtribución-NoComercial-SinDerivadas 2.5 Colombia
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dc.rightshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2
dc.subjectAedes aegypti
dc.subjectVariabilidad
dc.subjectGenética
dc.subjectND4
dc.subjectHaplotipos
dc.titleEstudios de caracterización genética de Aedes Aegypti (diptera: culicidae), vector del virus del dengue en Colombia, mediante el análisis del gen mitocondrial ND4


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