dc.contributorLizarazo Forero, Luz Marina
dc.creatorHernández Velandia, David Ricardo
dc.date.accessioned2019-12-09T22:19:02Z
dc.date.available2019-12-09T22:19:02Z
dc.date.created2019-12-09T22:19:02Z
dc.date.issued2019
dc.identifierHernández Velandia, D. R. (2019). Respuesta de plantas nativas a la inoculación con rizobacterias aisladas en el Páramo de Rabanal. (Tesis de Maestría). Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia, Tunja. http://repositorio.uptc.edu.co/handle/001/2965
dc.identifierhttp://repositorio.uptc.edu.co/handle/001/2965
dc.description.abstractLos páramos han sido descritos por su alta biodiversidad, capacidad hídrica y por almacenar grandes cantidades carbono orgánico en sus suelos, sin embargo, están siendo alterados por uso de maquinaria agrícola, la aplicación de fertilizantes y el pastoreo de ganado. Para tratar de revertir estos procesos de degradación, el uso de plantas nativas y bacterias promotoras de crecimiento puede ser una estrategia clave para mejorar la calidad del suelo, como también el desarrollo y el crecimiento de la vegetación. Por lo tanto, se hizo necesario conocer el efecto de la inoculación en plantas de Bucquetia Glutinosa (L. F.) DC y Pentacalia Pulchella (Kunth) Cuatrec., en condiciones de invernadero, usando rizobacterias promotoras de crecimiento que fueron aisladas en diferentes coberturas vegetales del páramo de Rabanal. Se realizaron pruebas de solubilización de fosfatos en medio PVK y producción de ácido indol-acético utilizando la solución indicadora de Salkowski, en donde solo el 73.3 % de las rizobacterias formaron halos de solubilización, mientras que el 93.3 % produjeron concentraciones diferentes de ácido indol-acético. Mediante la amplificación de la región 16s de rRNA, se pudo evidenciar que Pseudomonas fluorescens, Pseudomonas fragi y Pseudomonas sp., fueron las rizobacterias que mostraron la mayor capacidad para solubilizar fosfatos y producir ácido indol-acético en condiciones in vitro, además promovieron la germinación, el crecimiento y el desarrollo de Bucquetia glutinosa y Pentacalia pulchella.
dc.languagespa
dc.publisherUniversidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia
dc.publisherFacultad de Ciencias. Escuela de Posgrados. Maestría en Ciencias Biológicas
dc.relationAbbasi, R. (2005). Effects of different land-use types on soil quality in the hilly area of Rawalakot Azad Jammu and Kashmir. Acta Agriculturae Scandinavica Section B-Soil and Plant Science, 55(3):221-228.
dc.relationAcar, M., Celik, I. & Günal, H. (2018). Effects of long-term tillage systems on aggregate-associated organic carbon in the eastern Mediterranean region of Turkey. Eurasian Journal of Soil Science, 7(1):51-58.
dc.relationAcero-Nitola, A. & Cortés-Pérez, F.C. (2015). Propagation of native species from the basin of La Vega River, Tunja, Boyacá, with potential for ecological restoration. Rev. Acad. Colomb. Cienc. Exact. Fis. Nat, 38(147):195-205.
dc.relationAguirre-Medina, J., Mina-Briones, F., Cadena-Iñiguez, J., Dardón-Zunun, J. & Hernández-Sedas, D. (2014). Crecimiento de Cedrela odorata L. Biofertilizada con Rhizophagus intraradices y Azospirillum brasilense en vivero. Revista Chapingo. Serie ciencias forestales y del ambiente, 20(3):177-186.
dc.relationAhkami, A., White, R., Handakumbura, P. & Jansson, C. (2017). Rhizosphere engineering: enhancing sustainable plant ecosystem productivity. Rhizosphere, 3:233-243.
dc.relationAngulo, V., Sanfuentesa, E., Rodríguez, F. & Sossa, K. (2014). Caracterización de rizobacterias promotoras de crecimiento en plántulas de Eucalyptus nitens. Rev Argent Microbiol, 46(4):338-347
dc.relationArias, E. & Piñeros, P. (2008). Aislamiento e identificación de hongos filamentosos de muestras de suelo de los Páramos de Guasca y Cruz Verde (Tesis de pregrado). Bogotá: Pontificia Universidad Javeriana.
dc.relationAronson, J., Blignaut, J., Milton, S., Le-Maitre, D., Esler, et al. (2010). Are socioeconomic benefits of restoration adequately quantified? A metaanalysis of recent papers (2000–2008) in restoration ecology and 12 other scientific journals. Restoration Ecology 18:143–154.
dc.relationÁvila-Martínez, E., Lizarazo-Forero, L. & Cortés-Pérez, F. (2015). Promoción del crecimiento de Baccharis macrantha (Asteraceae) con bacterias solubilizadoras de fosfatos asociadas a su rizosfera. Acta biol. Colomb, 20(3):121-131.
dc.relationBach, E., dos Santos Seger, G., de Carvalho Fernández, G., Lisboa, B. & Passaglia, L. (2016). Evaluation of biological control and rhizosphere competence of plant growth promoting bacteria. Applied soil ecology,99:141-149.
dc.relationBhardwaj, D., Ansari, M., Sahoo, R., & Tuteja, N. (2014). Biofertilizers function as key player in sustainable agriculture by improving soil fertility, plant tolerance and crop productivity.Microbial cell factories, 13(1):66.
dc.relationHernández-Rodríguez, A., Rives-Rodríguez, N., Díaz-de la Osa, A., de la Fe- Pérez, Y., Pijeira-Fernández, G. & Divan-Baldani, V. (2016). Caracterización de bacterias diazotróficas asociativas con actividad promotora del crecimiento vegetal en Oryza sativa L. Revista Cubana de Ciencias Biológicas, 5(2):9.
dc.relationHernández-Velandia, D. & Lizarazo-Forero, L. (2015). Bacterias heterótrofas y oligotróficas en zonas conservadas e intervenidas del páramo de La Cortadera, Boyacá, Colombia. Revista UDCA Actualidad & Divulgación Científica, 18(2):475-483.
dc.relationHusen, E., Wahyudi, A. & Suwanto, A. (2011). Soybean response to 1- Aminocyclopropane-1-Carboxylate deaminase-producing Pseudomonas under field soil conditions. American Journal of Agricultural and Biological Sciences, 6(2):273-278
dc.relationBardgett, R. (2005). The biology of soil: a community and ecosystem approach. Oxford University Press. 242 p.
dc.relationInstituto Geografico Agustin Codazzi (IGAC).1990. Métodos Analíticos Laboratorio de Suelos. Subdirección de agrología. Bogotá D. C. 499 p.
dc.relationJassey, V., Chiapusio, G., Binet, P., Buttler, A., Laggoun-Défarge, F. et al. (2013). Above- and belowground linkages in Sphagnum peatland: climate warming affects plant-microbial interactions. Global Chang. Biol, 19:811– 823.
dc.relationJeyanthi, V. & Ganesh, P. (2013). Production, optimization and characterization of phytohormone Indole Acetic Acid by Pseudomonas fluorescence. Int J. Pharma Biol Arch, 4(2):514–20.
dc.relationKasotia, A., Varma, A., Tuteja, N. & Choudhary, D. (2016). Microbial-mediated amelioration of plants under abiotic stress: an emphasis on arid and semiarid climate. In: Choudhary, D., Varma, A., Tuteja, N. (Eds.), Plantmicrobe Interaction: an Approach to Sustainable Agriculture. Springer, Singapore, pp. 155–163.
dc.relationKuan, K., Othman, R., Abdul, R. & Shamsuddin, Z. (2016). Plant growthpromoting rhizobacteria inoculation to enhance vegetative growth, nitrogen fixation and nitrogen remobilisation of maize under greenhouse conditions. PLoS One, 11(3):e0152478
dc.relationKumar, V. & Narula, N. (1999). Solubilization of inorganic phosphates and growth emergence of wheat as affected by Azotobacter chroococcum mutants. Biology and Fertility of Soils, 28(3):301- 305.
dc.relationCuatrecasas, J. (1958). Aspectos de la vegetación natural de Colombia. Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas Fisicoquímicas y Naturales, 10(2):221-264.
dc.relationLauber, C. L., Hamady, M., Knight, R., & Fierer, N. (2009). Pyrosequencingbased assessment of soil pH as a predictor of soil bacterial community structure at the continental scale. Appl. Environ. Microbiol., 75(15), 5111- 5120.
dc.relationLiu, F., Xing, S., Ma, H., Du, Z. & Ma, B. (2013). Plant growth-promoting rhizobacteria affect the growth and nutrient uptake of Fraxinus americana container seedlings. Appl Microbiol Biotechnol, 97:4617–4625.
dc.relationLópez, D., Hoyos, A., Perdomo, F. & Buitrago, R. (2014). Efecto de rizobacterias promotoras de crecimiento vegetal solubilizadoras de fosfato en Lactuca sativa cultivar White Boston. Revista Colombiana de Biotecnología, 16(2):122-128.
dc.relationMarrero, M., Agaras, B., Wall, L. & Valverde, C. (2015). Enriquecimiento diferencial de Pseudomonas spp. en el rizoplano de distintas especies cultivadas. Revista argentina de microbiología, 47(2):132-137.
dc.relationBardgett, R.D. & Van der Putten, W.H. (2014). Belowground biodiversity and ecosystem functioning. Nature, 515, 505–511.
dc.relationMartin, L., Velázquez, E., Rivas, R., Mateos, P., MartínezMolina, E., et al. (2003). Effect of inoculation with a strain of Pseudomonas fragi on the growth and phosphorus content of strawberry plants. In Velazquez, E. & Rodriguez- Barrueco, C (eds.). (2002). First International Meeting on Microbial Phosphate Solubilization, Springer, The Netherlands, pp. 309-315.
dc.relationMatos, A., Gomes, I., Nietsche, S., Xavier, A., Gomes, W., et al. (2017). Phosphate solubilization by endophytic bacteria isolated from banana trees. Anais da Academia Brasileira de Ciências, 89(4):2945-2954.
dc.relationMayer, A. (1958). Determination of indole acetic acid by the Salkowsky reaction. Nature, 162:1670-1671.
dc.relationMiller, C., Handley, K., Wrighton, K., Frischkorn, K., Thomas, B. & Banfield, J. (2013). Short-read assembly of full-length 16S amplicons reveals bacterial diversity in subsurface sediments. PloS one, 8(2):e56018.
dc.relationMohan, V. & Radhakrishnan, A. (2012). Screening of phosphate solubilizing bacterial isolates for the growth improvement of Tectonia grandis Linn. Res J Microbiol, 7(2):101-113.
dc.relationDangi, S., Stahl, P., Wick, A., Ingram, L. & Buyer, J. (2012): Microbial community recovery in reclaimed soils on a surface coal mine site. Soil Sci. Soc. Am. J, 76:915-924.
dc.relationMolina-Romero, D., Bustillos-Cristales, M., Rodríguez-Andrade, O. & Elizabeth, Y. (2015). Mecanismos de fitoestimulación por rizobacterias , aislamientos en América y potencial biotecnológico. Revista de La DES Ciencias Biológico Agropecuarias, 17(2):24-34.
dc.relationMontenegro, A. & Vargas, O. (2008). Atributos vitales de especies leñosas en bordes de bosque altoandino de la Reserva Forestal de Cogua (Colombia). Revista de Biología Tropical, 56(2):705-720
dc.relationMuleta, D., Assefa, F., Börjesson, E. & Granhall, U. (2013). Phosphatesolubilising bacteria associated with Coffea arabica L. in natural coffee forests of southwestern Ethiopia. Journal of the Saudi Society of Agricultural Sciences, 12(1):73-84.
dc.relationMüller, A. & Weiler, E. (2000). Indolic constituents and indole-3-acetic acid biosynthesis in the wild-type and a tryptophan auxotroph mutant of Arabidopsis thaliana. Planta, 211:855–863.
dc.relationMurillo-Amador, B., Troyo-Diéguez, E., Jones, H., AyalaChairez, F., Tinoco- Ojanguren, C. & López-Cortés, A. (2000). Screening and classification of cowpea genotypes for salt tolerance during germination. J. Exp. Bot, 67:71-84.
dc.relationBarrera, J., Contreras, S., Garzón, N., Moreno, A. & Montoya, S. (2010). Manual para la restauración ecológica de los ecosistemas disturbados del distrito capital. Primera Edición. Bogotá: Pontificia Universidad Javeriana.
dc.relationPande, A., Pandey, P., Mehra, S., Singh, M., & Kaushik, S. (2017). Phenotypic and genotypic characterization of phosphate solubilizing bacteria and their efficiency on the growth of maize. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology, 15(2),379-391.
dc.relationPatten, C. & Glick, B. (2002). Role of Pseudomonas putida indoleacetic acid in development of the host plant root system. Appl. Environ. Microbiol., 68(8):3795-3801.
dc.relationPaul, D. & Sinha, S. (2013). Isolation of phosphate solubilizing bacteria and total heterotrophic bacteria from river water and study of phosphatase activity of phosphate solubilizing bacteria. Adv. Appl. Sci. Res., 4:409-412.
dc.relationPaul, D. & Sinha, S. (2017). Isolation and characterization of phosphate solubilizing bacterium Pseudomonas aeruginosa KUPSB12 with antibacterial potential from river Ganga, India. Annals of Agrarian Science, 15(1):130-136.
dc.relationDiaz-Santamaria, W. & Torres-Torres, C. (2017). Estudio básico de restauración vegetal en areas de subpáramo degradadas de la vereda Monquentiva- Guatavita. Tesis Pegrado. Universidad Distrital Francisco José de Caldas
dc.relationPereira, S. & Castro, P. (2014). Phosphate-solubilizing rhizobacteria enhance Zea mays growth in agricultural P-deficient soils. Ecological Engineering, 73:526-535.
dc.relationRadhapriya, P., Ramachandran, A., Dhanya, P., Remya, K. & Malini, P. (2014). An appraisal of physico-chemical and microbiological characteristics of Nanmangalam Reserve Forest soil. Journal of Environmental Biology, 35(6):1137–1144.
dc.relationRadhapriya, P., Ramachandran, A. & Palani, P. (2018). Indigenous plant growthpromoting bacteria enhance plant growth, biomass, and nutrient uptake in degraded forest plants. 3 Biotech, 8(3):1-10.
dc.relationRamachandran, A. & Radhapriya, P. (2016). Restoration of degraded soil in the Nanmangalam Reserve Forest with native tree species: effect of indigenous plant growth-promoting bacteria. The Scientific World Journal, 2016:1-9.
dc.relationRey-Benayas, J. & Bullock, J. (2012). Restoration of biodiversity and ecosystem services on agricultural land. Ecosystems, 15(6):883-899.
dc.relationRojas-Solís, D., Hernández-Pacheco, C. & Santoyo, G. (2016). Evaluación de Bacillus y Pseudomonas para colonizar la rizosfera y su efecto en la promoción del crecimiento en tomate (Physalis ixocarpa Brot. ex Horm.). Revista Chapingo. Serie horticultura, 22(1):45-58.
dc.relationBeltrán-Pineda, M. (2014a). Hongos solubilizadores de fosfato en suelo de páramo cultivado con papa (Solanum tuberosum). Revista Ciencia en Desarrollo, 5(2):145-154.
dc.relationRojas, M., Tejera, B., Bosh, D., Ríos, Y., Sánchez, J. & Heydrich, M. (2016) Potencialidades de cepas de Bacillus para la promoción del crecimiento en el cultivo del Zea mays L. Cub J. Agric. Sci., 50(3):485-496.
dc.relationSah, S., Singh, N., & Singh, R. (2017). Iron acquisition in maize (Zea mays L.) using Pseudomonas siderophore. 3 Biotech, 7(2):121.
dc.relationSaha, R., Saha, N., Donofrio, R. & Bestervelt, L. (2013). Microbial siderophores: a mini review. Journal of basic microbiology, 53(4):303-317.
dc.relationDorado, O. & Arias, D. (2018). Reforestar o restaurar para la recuperación ambiental. Inventio, la génesis de la cultura universitaria en Morelos, 2(3):34-38.
dc.relationSánchez, D., Gómez, R., Garrido, M. & Bonilla, R. (2012). Inoculación con bacterias promotoras de crecimiento vegetal en tomate bajo condiciones de invernadero. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 3(7):1401-1415
dc.relationSarmiento, C., Cadena, C., Sarmiento, M., Zapata, J. & León, O. (2013). Aportes a la conservación estratégica de los páramos de Colombia: Actualización de la cartografía de los complejos de páramo a escala 1:100.000. Bogotá, D.C.: Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt.
dc.relationSelvakumar, G., Joshi, P., Nazim, S., Mishra, P., Bisht, J. & Gupta, H. (2009). Phosphate solubilization and growth promotion by Pseudomonas fragi CS11RH1 (MTCC 8984), a psychrotolerant bacterium isolated from a high altitude Himalayan rhizosphere. Biología, 64(2):239-245.
dc.relationSiciliano, S. D., Palmer, A. S., Winsley, T., Lamb, E., Bissett, A., Brown, M. V., ... & Chu, H. (2014). Soil fertility is associated with fungal and bacterial richness, whereas pH is associated with community composition in polar soil microbial communities. Soil Biology and Biochemistry, 78, 10-20.
dc.relationSingh, S., Tripathi, D., Singh, S., Sharma, S., Dubey, N., et al. (2017). Toxicity of aluminium on various levels of plant cells and organism: a review. Environ. Exp. Bot., 137:177–193.
dc.relationSivasakthi, S., Usharani, G. & Saranraj, P. (2014). Biocontrol potentiality of plant growth promoting bacteria (PGPR)-Pseudomonas fluorescens and Bacillus subtilis: a review. African journal of agricultural research, 9(16):1265-1277.
dc.relationSuleman, M., Yasmin, S., Rasul, M., Yahya, M., Atta, B., & Mirza, M. (2018). Phosphate solubilizing bacteria with glucose dehydrogenase gene for phosphorus uptake and beneficial effects on wheat. PloS one, 13(9): e0204408.
dc.relationBeltrán-Pineda, M. (2014b). Estudio comparativo de poblaciones microbianas totales y solubilizadoras de fosfato en suelos de páramo cultivados con papa (Solanum tuberosum) en Ventaquemada-Boyacá. Investigación, innovación, ingeniería, 2:56-74.
dc.relationTahir, M. & Aqeel, S. (2013). Plant Growth promoting rhizobacteria (PGPR): A budding complement of synthetic fertilizers for improving crop production. Pakistan Journal of Life and Social Sciences, 11(1):1-7.
dc.relationTakishita, Y., Charron, J. & Smith, D. (2018). Biocontrol rhizobacterium Pseudomonas sp. 23S induces systemic resistance in tomato (Solanum lycopersicum L.) against bacterial canker Clavibacter michiganensis subsp. michiganensis. Front. Microbiol, 9:2119.
dc.relationFichtner, A., Von Oheimb, G., Härdtle, W., Wilken, C. & Gutknecht, L. (2014). Effects of anthropogenic disturbances on soil microbial communities in oak forests persist for more than 100 years. Soil Biology and Biochemistry, 70:79-87.
dc.relationTipayno, S., Kim, C. & Sa, T. (2012). T-RFLP analysis of structural changes in soil bacterial communities in response to metal and metalloid contamination and initial phytoremediation. Appl. Soil Ecol., 61:137–146.
dc.relationVejan, P., Abdullah, R., Khadiran, T., Ismail, S., Boyce, A. (2016). Role of plant growth promoting Rhizobacteria in agricultural sustainability- A review. Molecules, 21(573):1–17.
dc.relationVelasco-Linares, P., Díaz-Martín, R. & Vargas, O. (2008). Los parches de plantas herbáceas colonizadoras de potreros y el crecimiento y supervivencia de especies heliófilas leñosas. En: Vargas, O. 2008. Estrategias para la restauración ecológica del bosque Altoandino: El caso de la Reserva Forestal Municipal de Cogua, Cundinamarca. Universidad Nacional de Colombia. Facultad de Ciencias, 372p.
dc.relationViteri, P., Castillo, D. & Viteri, R. (2016). Capacidad y diversidad de bacterias celulolíticas aisladas de tres hábitats tropicales en Boyacá, Colombia. Acta Agronómica, 65(4),362-367.
dc.relationWani, P., Khan, M. & Zaidi, A. 2007. Chromium reduction, plant growth promoting potentials and metal solubilization by Bacillus sp. isolated from alluvial soil. Current Microbiology , 54:237–243.
dc.relationWardle, D., Jonsson, M., Bansal, S., Bardgett, R., Gundale, M. & Metcalfe, D. (2012). Linking vegetation change, carbon sequestration and biodiversity: insights from island ecosystems in a long-term natural experiment. J. Ecol., 100:16-30.
dc.relationWidnyana, I. & Javandira, C. (2016). Activities Pseudomonas spp. and Bacillus sp. to stimulate germination and seedling growth of tomato plants. Agriculture and Agricultural Science Procedia, 9:419-423.
dc.relationYu, X., Liu, X., Zhu, T., Liu, G., Mao, C. (2012). Co-inoculation with phosphatesolubilzing and nitrogen-fixing bacteria on solubilization of rock phosphate and their effect on growth promotion and nutrient uptake by walnut. Eur J Soil Biol., 50:112-117
dc.relationBeltrán-Pineda, M. & Lizarazo-Forero, L. (2013). Grupos funcionales de microorganismos en suelos de páramo perturbados por incendios forestales. Revista de Ciencias, 17(2):121-136.
dc.relationZahid, M., Abbasi, M. K., Hameed, S. & Rahim, N. (2015). Isolation and identification of indigenous plant growth promoting rhizobacteria from Himalayan region of Kashmir and their effect on improving growth and nutrient contents of maize (Zea mays L.). Front Microbiol, 6, 207.
dc.relationFlórez-Márquez, J., Leal-Medina, G., Ardila-Leal, L. & Cárdenas-Caro, D. (2017). Aislamiento y caracterización de rizobacterias asociadas a cultivos de arroz (Oryza sativa L.) del Norte de Santander (Colombia). Agrociencia, 51(4):373-391.
dc.relationBenavides, G. & Hermida, A. (2008). Aislamiento e identificación de flora bacteriana nativa de los páramos Cruz Verde y Guasca (Cundinamarca) (Tesis de pregrado). Bogotá: Pontificia Universidad Javeriana
dc.relationBernal, E., Celis, S., Galindez, X., Moratto, C. & Garcia, D. (2006). Microflora cultivable y endomicorrizas obtenidas en hojarasca de bosque (Páramo Guerrero–Finca Puente de Tierra) Zipaquirá, Colombia. Acta biol Colomb. 11(2):125-130
dc.relationBrady, N. & Weil, R. (2016): The nature and properties of soils. 15th Edition. Pearson Education Limited. England, Academic Press.
dc.relationBrevik, E., Cerdà, A., Mataix-Solera, J., Pereg, L., Quinton J., et al. (2015). The interdisciplinary nature of SOIL. SOIL 1:117–129.
dc.relationCabrera, M. & Ramirez, Y. (2014). Restauración ecológica de los páramos de Colombia. Transformación y herramientas para su conservación. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt (IAvH). Bogota, D.C. Colombia. 296 p.
dc.relationCardona, A. (2008). Propagación vegetativa de cinco especies potencialmente importantes parta la restauración ecológica del bosque antoandino. En: Vargas, O. (ed). Restauración ecológica del bosque altoandino. Estudios diagnósticos y experimentales en los alrededores del Embalse de Chisacá (Localidad de Usme, Bogotá D.C.): Universidad Nacional de Colombia, pp. 497-516.
dc.relationCastellanos, D., Burgos, L., Zabala, D., Botía, M. & Fernanda, M. (2010). Caracterización de bacterias diazotróficas asimbióticas asociadas al eucalipto (Eucalyptus sp.) en Codazzi, Cesar (Colombia). Acta Biológica Colombiana, 15(3):107-120.
dc.relationChiew, Y., Spångberg, J., Baky, A., Hansson, P. & Jönsson, H. (2015). Environmental impact of recycling digested food waste as a fertilizer in agriculture. A case study. Resources, Conservation and Recycling, 95:1- 14.
dc.relationClewell, A. & Aronson, J. (2017). Restauración Ecológica: Principios, Valores y Estructura de una Profesión Emergente. Island Press. Segunda edición.
dc.relationCorporación autónoma regional de Chivor (CORPOCHIVOR). (2014). Actualización y socialización del plan de manejo ambiental para el distrito regional de manejo integrado (DRMI) páramo de Rabanal. 86 p.
dc.relationGaravito-Rincón, L. (2015). Los páramos en Colombia, un ecosistema en riesgo. Ingeniare, (19):127-136.
dc.relationCostantini, E., Branquinho, C., Nunes, A., Schwilch G, Stavi, I., et al. (2015). Soil indicators to assess the effectiveness of restoration strategies in dryland ecosystems. Solid Earth Discussions 7:3645–87.
dc.relationGarcia, F., Menendez, E. & Rivas, R. (2015). Role of bacterial bio fertilizers in agriculture and forestry. AIMS Bioeng, 2:183-205.
dc.relationGatica-Saavedra, P., Echeverría, C. & Nelson, C. (2017). Ecological indicators for assessing ecological success of forest restoration: a world review. Restoration ecology, 25(6):850-857.
dc.relationGonzales-Quiñones, V., Stockdale, E., Banning, N., Hoyle, F., Sawada, Y., et al. (2011). Soil microbial biomass: interpretation and consideration for soil monitoring. Soil Research, 49:287–304.
dc.relationDaza-Torres, M., Hernández-Flórez, F. & Alba-Triana, F. (2014). Efecto del uso del suelo en la capacidad de almacenamiento hídrico en el páramo de Sumapaz-Colombia. Revista Facultad Nacional de Agronomía- Medellín, 67(1):7189-7200
dc.relationGouda, S., Kerry, R., Das, G., Paramithiotis, S., Shin, H. & Patra, J. (2018). Revitalization of plant growth promoting rhizobacteria for sustainable development in agriculture. Microbiological research, 206:131-140.
dc.relationHernández-Pineda, L., Roa-Casas, O. & Cortés-Pérez, F. (2015). Crecimiento de Baccharis macrantha y Viburnum triphyllum, dos especies nativas útiles en restauración ecológica, plantadas en un pastizal andino (Boyacá, Colombia). Biota Colombiana, 15(2):27-38.
dc.relationHernández-Velandia, D. & Lizarazo-Forero, L. (2015). Bacterias heterótrofas y oligotróficas en zonas conservadas e intervenidas del páramo de La Cortadera, Boyacá, Colombia. Revista UDCA Actualidad & Divulgación Científica, 18(2):475-483.
dc.relationHofstede, R., Segarra, P. & Vasconez, P. (2003). Los páramos del mundo. Global Peatland Initiative/ NC-IUCN/ Ecociencia. Quito. 299 p.
dc.relationInstituto de Hidrología, Meteorología y Estudios Ambientales (IDEAM). (2013). Manual de usuario Apply Kalman Filter Linux. Grupo de Modelamiento de Tiempo y Clima. Subdirección de Meteorología IDEAM.
dc.relationKumar, A. (2016). Phosphate solubilizing bacteria in agriculture biotechnology: diversity, mechanism and their role in plant growth and crop yield. Int J Adv Res, 4:116-124
dc.relationLal, R. (2015). Restoring soil quality to mitigate soil degradation. Sustainability, 7:5875–5895.
dc.relationLizarazo-Medina, P. & Gómez-Vásquez, D. (2015). Microbiota rizosférica de Espeletia sp. de los Páramos de Santa Inés y de Frontino-Urrao en Antioquia, Colombia. Acta Biol. Colomb, 20(1):175-182.
dc.relationMarschner, P. & Rengel, Z. (2007): Nutrient cycling in terrestrial ecosystems. Springer- Verlag Berlin, 391 p.
dc.relationMartínez-Nieto, P. & García-González, D. (2010). Bacterias diazotroficas y solubilizadoras de fósforo aisladas de las especies forestales Altoandinas Colombianas Weinmannia tomentosa y Escallonia myrtilloides. Intropica, 5(1):63-76.
dc.relationDe-Bashan, L., Hernández, J. & Bashan, Y. (2012). The potential contribution of plant growth-promoting bacteria to reduce environmental degradation-a comprehensive evaluation. Applied Soil Ecology, 61:171–189.
dc.relationMichaelis, J. & Diekmann, M. (2018).Effects of soil types and bacteria inoculum on the cultivation and reintroduction success of rare plant species. Plant Ecol, 219:441–453.
dc.relationMinisterio de Ambiente y Desarrollo Sostenible (MADS). 2013. Plan Nacional de Restauración: restauración ecológica, rehabilitación y recuperación de áreas disturbadas. Ministerio de Ambiente y Desarrollo Sostenible. 80 p.
dc.relationMonroy, L. & Lizarazo-Forero, L. (2010). Identificación de hongos fitopatógenos asociados al roble (quercus humboldtii bonpl.), en Los Municipios De Encino (Santander), Arcabuco, Y Tipacoque (Boyacá). Colombia Forestal, 13(2):347-356.
dc.relationMorales, M., et al. (2007). Atlas de Páramos de Colombia. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. Bogotá, D. C. 208 p.
dc.relationMoratto, C., Martínez, L., Valencia, H. & Sánchez, J. (2005). Efecto del uso del suelo sobre hongos solubilizadores de fosfato y bacterias diazotróficas en el páramo de Guerrero (Cundinamarca). Agronomía Colombiana, 23(2): 299-309
dc.relationMukhopadhyay, S., Maiti, S. & Masto, R. (2014). Development of mine soil quality index (MSQI) for evaluation of reclamation success: a chronosequence study. Ecological Engineering, 71:10–20.
dc.relationMuñoz-Rojas, M., Erickson, T., Dixon, K. & Merritt, D. (2016). Soil quality indicators to assess functionality of restored soils in degraded semiarid ecosystems. Restoration Ecology 24: 43-52.
dc.relationMuñoz, F. & Pérez, E. (2018). Conflictos de uso de suelo en la frontera agrícola y áreas del páramo del municipio de Totoró, Cauca. Suelos Ecuatoriales, 47(1 y 2):10-17.
dc.relationMurcia-Linares, A. & Cruz-Bustos, S. (2017). Efecto de la inoculación de bacterias promotoras del crecimiento vegetal en maracuyá y badea cultivadas en condiciones de estrés hídrico. (Tesis de pregrado). Bogotá: Universidad de la Salle
dc.relationMurcia, C., Guariguata, M., Andrade, Á., Andrade, G., Aronson, J. et al. (2016). Challenges and prospects for scaling-up ecological restoration to meet international commitments: Colombia as a case study. Conservation Letters, 9(3):213-220
dc.relationDelgado, A. & Gómez, J. (2016). Soil. Physical, Chemical and Biological Properties. Chapter 2. En: Villalobos, E. Fereres (eds.), Principles of Agronomy for Sustainable Agriculture, Springer International. España. 549 p.
dc.relationNuman, M., Bashir, S., Khan, Y., Mumtaz, R., Shinwari, Z. et al. (2018). Plant growth promoting bacteria as an alternative strategy for salt tolerance in plants: a review. Microbiological research, 209:21-32.
dc.relationOrozco-Jaramillo, C. & Martínez-Nieto, P. (2009). Evaluación de la inoculación con microorganismos fijadores de nitrógeno asimbióticos aislados de la rizósfera de Pinus patula en Colombia. Bosque, 30:70-77.
dc.relationOrtiz-Galeana, M., Hernández-Salmerón, J., Valenzuela-Aragón, B., De los Santos-Villalobos, S., Rocha-Granados, M. & Santoyo G. (2018). Diversidad de bacterias endófitas cultivables asociadas a plantas de arándano (Vaccinium corymbosum L.) cv. Biloxi con actividades promotoras del crecimiento vegetal. Chilean J. Agric. Anim. Sci., ex Agro- Ciencia, 34(2):140-151.
dc.relationPalmer, M., Zedler, J. & Falk, D. (2016). Ecological theory and restoration ecology. In Foundations of restoration ecology. Island Press, Washington, DC, pp. 3-26.
dc.relationPassari, A., Chandra, P., Mishra, V., Leo, V., Gupta, V., et al. (2016). Detection of biosynthetic gene and phytohormone production by endophytic actinobacteria associated with Solanum lycopersicum and their plantgrowth- promoting effect. Research in microbiology, 167(8):692-705.
dc.relationPérez, Y., Charest, C., Dalpé, Y., Séguin, S., Wang, X. & Khanizadeh, S. (2016). Effect of inoculation with Arbuscular Mycorrhizal fungi on selected spring wheat lines.Sustainable Agriculture Research, 5(526):2017-2645.
dc.relationRaiesi, F. & Beheshti, A. (2015). Microbiological indicators of soil quality and degradation following conversion of native forests to continuous croplands. Ecological Indicators, 50:173-185.
dc.relationRey-Benayas, J., Newton, A., Diaz. A. & Bullock, J. (2009) Enhancement of biodiversity and ecosystem services by ecological restoration: a metaanalysis. Science, 325:1121–1124.
dc.relationRivera, D. & Rodríguez, C. (2011). Guía divulgativa de criterios para la delimitación de páramos de Colombia. Bogotá. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. 68 p.
dc.relationRiveros, A. (2009). Elementos de una historia socioambiental para el macizo de Rabanal. Informe de práctica. 106 p.
dc.relationDíaz, E., León, O. & Vargas, O. (2008). Sobrevivencia y crecimiento de plántulas debajo de Lupinus bogotensis implicaciones para la restauración. En: Vargas, O. 2008. Estrategias para la restauración ecológica del bosque Alto andino: El caso de la Reserva Forestal Municipal de Cogua, Cundinamarca. Universidad Nacional de Colombia. Facultad de Ciencias, 372 p
dc.relationRomán, N., Mamani, G. & García, D. (2013). Caracterización molecular de bacteria Azospirillum sp, Azotobacter sp y Pseudomonas sp. promotoras del crecimiento vegatal de cultivos de Solanum tuberosum y Zea mays. PROSPECTIVA UNIVERSITARIA, 10(1): 3-16.
dc.relationRosenzweig, S., Carson, M., Baer, S. & Blair, J. (2016). Changes in soil properties, microbial biomass, and fluxes of C and N in soil following postagricultural grassland restoration. Applied soil ecology,100:186-194.
dc.relationSantoyo, G., Moreno-Hagelsieb, G., Orozco-Mosqueda, M. & Glick, B. (2016). Plant growth-promoting bacterial endophytes. Microbiological research, 183:92-99.
dc.relationSingh, J., Pandey, V. & Singh, D.P. (2011). Efficient soil microorganisms: A new dimension for sustainable agriculture and environmental development. Agriculture, Ecosystems and Environment, 140:339–353
dc.relationSociety for Ecological Restoration International-Sociedad Internacional para la Restauración Ecológica (SER). (2004). Principios de SER International sobre la restauración ecológica. Sociedad Internacional para la restauración ecológica. Tucson, Arizona, Estados Unidos de América. 15 p.
dc.relationUbertino, S., Mundler, P. & Tamini, L. (2016). The adoption of sustainable management practices by Mexican coffee producers. Sustainable Agriculture Research, 5(526):2017-2642).
dc.relationUseche, D. & Márquez, S. (2015). Diagnóstico socio-ambiental de la producción agrícola en el páramo de Rabanal (Colombia) como base para su reconversión agroecológica. Ciencia y Agricultura, 12(1):27-37.
dc.relationVacheron,J., Desbrosses, G., Bouffaud, M., Touraine, B., Moënne-Loccoz, Y. et al. (2013). Plant growth promoting rhizobacteria and root system functioning Front. Plant Sci., 4(356):1-19.
dc.relationVargas, O. (2008). Estrategias para la restauración ecológica del bosque altoandino. El caso de la Reserva Forestal Municipal de Cogua, Cundinamarca). En: Velasco-Linares, P. & Vargas, O. Problemática de los Bosques Altoandinos. Bogotá: Universidad Nacional de Colombia. p. 41- 56.
dc.relationVargas, O. (2011). Restauración ecológica: biodiversidad y conservación. Acta Biológica Colombiana, 16(2):221-246
dc.relationDutta, S., Surovy, M., Gupta, D., Mahmud, N., Chanclud, E., et al. (2018). Genomic analyses reveal that biocontrol of wheat blast by Bacillus spp. may be linked with production of antimicrobial compounds and induced systemic resistance in host plants. Figshare, 1–7.
dc.relationVargas, O. 2013. Disturbios en los páramos andinos. En: Cortés-Duque, J. & Sarmiento, C. (Eds). 2013. Visión socioecosistémica de los páramos y la alta montaña colombiana: memorias del proceso de definición de criterios para la delimitación de páramos. Instituto de Investigación de Recursos Biológicos Alexander von Humboldt. Bogotá, D.C. Colombia.
dc.relationViteri-Flórez, P., Castillo-Guerra, D. & Viteri-Rosero, S. (2016). Capacidad y diversidad de bacterias celulolíticas aisladas de tres hábitats tropicales en Boyacá, Colombia. Acta Agron, 65(4):362-367.
dc.relationWang, Y., Fu, B., Lü, Y & Chen, L. (2011). Effects of vegetation restoration on soil organic carbon sequestration at multiple scales in semi-arid Loess Plateau, China. Catena, 85:58–66.
dc.relationAgbodjato, N., Noumavo, P., Baba-Moussa, F., Salami, H., Sina, H., et al. (2015). Characterization of potential plant growth promoting rhizobacteria isolated from maize (Zea mays L.) in central and northern Benin (West Africa). Appl. Environ. Soil Sci, 1–9.
dc.relationAhemad, M. & Kibret, M. (2014). Mechanisms and applications of plant growth promoting rhizobacteria: current perspective. J. King Saud Univ.– Sci, 26:1-20.
dc.relationAli-Saber, F., Abdelhafez, A., Hassan, E. & Ramadan, E. (2015). Characterization of fluorescent pseudomonads isolates and their efficiency on the growth promotion of tomato plant. Annals of Agricultural Sciences, 60(1):131-140.
dc.relationÁlvarez, C., Osorio, N. & Marín, M. (2013). Identificación molecular de microorganismos asociados a la rizosfera de plantas de vainilla en Colombia. Acta Biológica Colombiana, 18(2):293-305
dc.relationAraya, E., Gómez, L., Hidalgo, N. & Valverde, R. (2000). Efecto de la luz y del ácido giberélico sobre la germinación in vitro de jaúl (Alnus acuminata). Agron. Costarr, 24(1):75-80.
dc.relationArseneault, T., Goyer, C. & Filion, M. (2015). Pseudomonas fluorescens LBUM223 increases potato yield and reduces common scab symptoms in the field. Phytopathol, 105(10):1311-1317.
dc.relationBabalola, O. (2010). Beneficial bacteria of agricultural importance. Biotechnology letters, 32(11):1559-1570
dc.relationFarina, R., Beneduzi, A., Ambrosini, A., Campos, S., Brito, B, et al. (2012). Diversity of plant growth-promoting rhizobacteria communities associated with the stages of canola growth. Appl Soil Ecol, 55:44-52.
dc.relationBarquero, L., Roos, M., Lorío, L. & Chinchilla, R. (2015). Inoculación al suelo con Pseudomonas fluorescens, Azospirillum oryzae, Bacillus subtilis y microorganismos de montaña (mm) y su efecto sobre un sistema de rotación soya-tomate bajo condiciones de invernadero. Agronomía Costarricense, 39(3).
dc.relationBashan, Y., Salazar, G., Moreno, M., Lopez, B. & Linderman, R. (2012). Restoration of eroded soil in the Sonoran desert with native leguminous trees using plant growth-promoting microorganisms and limited amounts of compost and water. Journal of Environmental Management, 102:26–36.
dc.relationBautista, G., Mendoza, H. & Uribe, D. (2007). Biocontrol of Rhizoctonia solani in native potato (Solanum phureja) plants using native Pseudomonas fluorescens. Acta Biológica Colombiana, 12(1):19-32.
dc.relationBerger, B., Wiesner, M., Brock, A., Schreiner, M. & Ruppel, S. (2015). K. radicincitans: a beneficial bacteria that promotes radish growth under field conditions. Agron. Sustain. Dev, 35:521-1528.
dc.relationBernal, L. (2010). Aislamiento de microorganismos solubilizadores de P (PSM) de las raíces de Vanilla sp. Tesis de grado. Pontificia Universidad Javeriana. Bogotá. 30 p.
dc.relationBhattacharyya, P. & Jha, D. (2012). Plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR): emergence in agriculture. World J. Microbial. Biotechnol, 28:1327–1350.
dc.relationBullock, J., Aronson, J., Newton, A., Pywell, R. & Rey-Benayas, J. (2011). Restoration of ecosystem services and biodiversity: conflicts and opportunities. Trends in Ecology and Evolution, 26:541–549.
dc.relationCardenas-Burgos, C. (2018). Sistema reproductivo, análisis citogenético y micropropagación de Bucquetia glutinosa y Monochaetum myrtoideum con fines de restauración, replantación y conservación del páramo de rabanal, Boyacá-Colombia. Tesis de Maestría. Universidad Pedagógica Y Tecnológica De Colombia.
dc.relationChau, J., Bagtzoglou, A. & Willig, M. (2011). The effect of soil texture on richness and diversity of bacterial communities. Environ. Forensics 12:333–341
dc.relationCline, M. (1944). Principles of soil sampling. Soil Science. 58:275
dc.relationFasciglione, G., Casanovas, E., Quillehauquy, V., Yommi, A., Goni, M., et al. (2015). Azospirillum inoculation effects on growth, product quality and storage life of lettuce plants grown under salt stress. Scientia Horticul, 195:154–162
dc.relationConde, M., Ocampo, S., Castañeda, G., Hernández, A. & Aguilar, G. (2018). Effect of fluorescent Pseudomonas on tomato seed germination and seedling vigor. Revista Chapingo Serie Horticultura, 24(2):121-131.
dc.relationFigueiredo, N., Carranca, C., Goufo, P., Pereira, J., Trindade, H. & Coutinho, J. (2015). Impact of agricultural practices, elevated temperature and atmospheric carbon dioxide concentration on nitrogen and pH dynamics in soil and floodwater during the seasonal rice growth in Portugal. Soil Tillage Res, 145:198-207
dc.relationFinkel, O., Castrillo, G., Paredes, S., González, I. & Dagl, J. (2017). Understanding and exploiting plant beneficial microbes. Curr. Opin. Plant Biol. 38: 55–163.
dc.relationFischer, S., Fischer, S., Magris, S. & Mori, G. (2007). Isolation and characterization of bacteria from the rhizosphere of wheat. World Journal of Microbiology and Biotechnology, 23(7):895-903.
dc.relationBarbosa-Castillo, C., Cruz-Argüello, S., Ramírez-Aguilera, D., Salazar Holguín, F., Ville-Triana, J., et al. (2018). Transformación y cambio en el uso del suelo en los páramos de Colombia en las últimas décadas. IDEAM, pp. 210-333.
dc.relationGarrido, M. (2007). Aislamiento e identificación de bacterias diazotróficas rizosféricas y endófitas asociadas a suelos y pastos del valle y sabana del cesar en dos épocas climáticas. Tesis Maestría en Biología Aplicada. Universidad Militar Nueva Granada, Bogotá.
dc.relationGlick, B. R. (2014). Bacteria with ACC deaminase can promote plant growth and help to feed the world. Microbiological Research, 169(1),30-39.
dc.relationGlickman, E. & Dessaux, Y. (1995). A Critical examination of the specificity of the salkowsky reagent for indolic compounds produced by phytopathogenic bacteria. Applied and Environmental Microbiology, 61(2):793-796.
dc.relationGrobelak, A., Napora, A., & Kacprzak, M. (2015). Using plant growth-promoting rhizobacteria (PGPR) to improve plant growth. Ecological Engineering, 84:22-28.
dc.relationHaney, C., Wiesmann, C., Shapiro, L., Melnyk, R., O’Sullivan, L., et al. (2018). Rhizosphere-associated Pseudomonas induce systemic resistance to herbivores at the cost of susceptibility to bacterial pathogens. Mol. Ecol, 27:1833–1847.
dc.relationHernández-Montiel, L., Contreras, C., Gregorio, R., Castillo-Rocha, D., Chiquito- Contreras, C., et al. (2018). Efecto de microcápsulas de Pseudomonas putida sobre crecimiento y rendimiento de pimiento morrón. Revista mexicana de ciencias agrícolas, 9(20):4223-4233.
dc.relationHernández-Pineda, L., Roa-Casas, O. & Cortés-Pérez, F. (2015). Crecimiento de Baccharis macrantha y Viburnum triphyllum, dos especies nativas útiles en restauración ecológica, plantadas en un pastizal andino (Boyacá, Colombia). Biota Colombiana, 15(2):27-38.
dc.rightshttps://creativecommons.org/licenses/by-nc-nd/4.0/
dc.rightsinfo:eu-repo/semantics/openAccess
dc.rightsAtribución-NoComercial-SinDerivadas 4.0 Internacional (CC BY-NC-ND 4.0)
dc.rightshttp://purl.org/coar/access_right/c_abf2
dc.rightsCopyright (c) 2019 Universidad Pedagógica y Tecnológica de Colombia
dc.titleRespuesta de plantas nativas a la inoculación con rizobacterias aisladas en el Páramo de Rabanal
dc.typeTrabajo de grado - Maestría


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